| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 英文缩略词 | 第11-12页 |
| 第一章 氧化应激模型的建立及氧化应激与自噬的激活 | 第12-28页 |
| 1 引言 | 第12-14页 |
| 2 材料和方法和试剂的配制 | 第14-20页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第14-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-20页 |
| 3 实验结果 | 第20-24页 |
| 3.1 不同浓度的的H_2O_2对细胞抑制率的影响 | 第20-21页 |
| 3.2 不同浓度H_2O_2诱导的自噬强弱 | 第21-24页 |
| 4 讨论 | 第24-27页 |
| 4.1 氧化应激模型的建立及评估 | 第24-25页 |
| 4.2 氧化应激与自噬 | 第25-27页 |
| 5 结论 | 第27-28页 |
| 第二章 自噬溶酶体途径在氧化应激时对SPCA1活性的影响 | 第28-46页 |
| 1 引言 | 第28-29页 |
| 2 材料和方法 | 第29-38页 |
| 2.1 仪器和材料 | 第29-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3 统计方法 | 第38-39页 |
| 4 结果 | 第39-42页 |
| 4.1 Fura-2/AM检测细胞内Ca~(2+)浓度 | 第39-40页 |
| 4.2 Western blot测定不同组份SPCA1蛋白表达变化 | 第40-42页 |
| 5. 讨论 | 第42-45页 |
| 5.1 Fura-2/am 检测细胞内Ca~(2+)浓度 | 第42页 |
| 5.2 氧化应激状态下自噬溶酶体途径可影响SPCA1的表达 | 第42-45页 |
| 6 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 综述 | 第52-65页 |
| References | 第60-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
