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耐辐射奇球菌DNA末端切割过程的结构与功能学研究

项目资助第6页
ACKNOWLEDGEMENTS第6-7页
致谢第7-9页
摘要第9-11页
Abstract第11-12页
主要缩略词第16-17页
第1章 文献综述第17-50页
    1.1 耐辐射球菌DNA损伤修复机制的研究进展第17-38页
        1.1.1 耐辐射奇球菌概述第17-19页
        1.1.2 耐辐射奇球菌辐射抗性机制第19-34页
        1.1.3 耐辐射奇球菌特有的修复相关蛋白及机制第34-38页
    1.2 RecJ/DHH家族生物学功能研究进展第38-46页
        1.2.1 RecJ/DHH家族概述第38-39页
        1.2.2 RecJ蛋白的研究进展第39-42页
        1.2.3 RecJ-like蛋白的研究进展第42-44页
        1.2.4 其它RecJ/DHH家族成员的研究进展第44-46页
    1.3 HerA-NurA复合体生物学功能研究进展第46-50页
        1.3.1 HerA蛋白研究进展第46-47页
        1.3.2 NurA蛋白研究进展第47-48页
        1.3.3 HerA-NurA复合体的研究进展第48-50页
第2章 耐辐射奇球菌RecJ蛋白整体结构及各结构域功能的研究第50-74页
    2.1 引言第50页
    2.2 材料与方法第50-57页
        2.2.1 设备与菌体培养第50-51页
        2.2.2 补偿菌株与蛋白表达载体的构建第51-54页
        2.2.3 RecJ全长蛋白及其截断蛋白的表达与纯化第54-55页
        2.2.4 SDS-PAGE银染方法第55页
        2.2.5 RecJ结晶实验第55页
        2.2.6 晶体X射线衍射数据的收集和分析第55-56页
        2.2.7 Western blotting分析RecJ全长蛋白及其截断蛋白在体内的表达情况第56页
        2.2.8 生存率的测定第56-57页
        2.2.9 生长曲线的测定第57页
        2.2.10 RecJ全长蛋白及其截断蛋白的核酸酶活性实验第57页
        2.2.11 RecJ全长蛋白及其截断蛋白的DNA结合实验第57页
    2.3 结果与讨论第57-72页
        2.3.1 drRecJ全长蛋白的纯化第57-61页
        2.3.2 drRecJ-dTMP复合体的结晶及结构解析第61-63页
        2.3.3 drRecJ全长蛋白和各结构域的结构总览第63-67页
        2.3.4 drRecJ结构和生化水平的金属偏好性研究第67-69页
        2.3.5 drRecJ全长蛋白及其截断体对recJ突变株补偿效果分析第69-71页
        2.3.6 drRecJ各截断体的纯化第71页
        2.3.7 drRecJ全长蛋白及其截断体的DNA酶切效率比较第71-72页
        2.3.8 drRecJ全长蛋白及其截断体的DNA结合能力比较第72页
    2.4 本章小结第72-74页
第3章 RecJ-DNA复合物晶体结构的解析第74-95页
    3.1 引言第74页
    3.2 材料与方法第74-77页
        3.2.1 蛋白纯化与结晶第74-76页
        3.2.2 drRecJ全长蛋白及其各点突变蛋白的核酸酶活性实验第76-77页
    3.3 结果与讨论第77-92页
        3.3.1 drRecJ的底物分析第77-78页
        3.3.2 drRecJ催化中心点突变蛋白活性比较及金属离子结合情况分析第78-80页
        3.3.3 drRecJ-DNA复合体结构概况第80-83页
        3.3.4 drRecJ DNA结合通道的结构分析第83-86页
        3.3.5 drRecJ OB fold特殊的DNA结合方式第86-88页
        3.3.6 从结构上分析drRecJ的催化机制第88-91页
        3.3.7 从结构上分析DHH家族subfamily1和subfamily2底物的区别第91-92页
    3.4 本章小结第92-95页
第4章 RecJ-SSB-Ct复合物晶体结构的解析以及末端处理过程模拟第95-106页
    4.1 引言第95页
    4.2 材料与方法第95-97页
        4.2.1 体内Co-IP鉴定互作蛋白第95-96页
        4.2.2 表达载体的构建第96页
        4.2.3 蛋白纯化与结晶第96-97页
        4.2.4 核酸酶活性实验第97页
    4.3 结果与讨论第97-105页
        4.3.1 drRecJ互作蛋白的获得与鉴定第97-98页
        4.3.2 SSB-Ct结合位点位于drRecJ的C端结构域第98-102页
        4.3.3 SSB-Ct与drRecJ的互作是其激活RecJ活性所必须第102-103页
        4.3.4 SSB与RecQ激活drRecJ的可能机制第103-105页
    4.4 本章小结第105-106页
第5章 HerA-NurA复合体生化功能的研究第106-139页
    5.1 引言第106页
    5.2 材料与方法第106-116页
        5.2.1 设备与菌体培养第106页
        5.2.2 herA,nurA和nurA-herA突变菌株的构建第106-109页
        5.2.3 补偿菌株与蛋白表达载体的构建第109-110页
        5.2.4 HerA蛋白与NurA蛋白的纯化第110-111页
        5.2.5 酵母双杂交实验第111页
        5.2.6 分析凝胶过滤实验第111-112页
        5.2.7 Pull down实验第112页
        5.2.8 HerAATPase活性分析第112-113页
        5.2.9 核酸酶活性分析第113页
        5.2.10 Western blotting分析补偿菌株是否构建成功第113页
        5.2.11 生存率的测定第113-114页
        5.2.12 生长曲线的测定第114页
        5.2.13 重组率的测定第114-115页
        5.2.14 荧光共聚焦对HerA和NurA蛋白体内的定位研究第115-116页
    5.3 结果与讨论第116-137页
        5.3.1 nurA,herA生物信息学分析第116-122页
        5.3.2 drNurA和drHerA互作的验证第122-124页
        5.3.3 HerAATPase活性的研究第124-126页
        5.3.4 drNurA酶切活性的研究第126-131页
        5.3.5 nurA,herA和nurA/herA基因敲除的验证第131-133页
        5.3.6 nurA,herA和nurA/herA突变株的生长情况第133-134页
        5.3.7 nurA,herA和nurA/herA突变株的生存率变化第134页
        5.3.8 nurA,herA和nurA/herA突变株的重组率变化第134-136页
        5.3.9 NurA和HerA在体内的分布情况第136-137页
    5.4 本章小结第137-139页
第6章 RecJ与HerA的互作以及与HerA-NurA复合体关系的研究第139-150页
    6.1 引言第139页
    6.2 材料与方法第139-140页
        6.2.1 设备与菌体培养第139页
        6.2.2 蛋白纯化第139页
        6.2.3 Far Western blot检验RecJ和HerA的互作第139页
        6.2.4 Pull down实验检验RecJ和HerA的互作第139-140页
        6.2.5 DNA酶切实验和DNA结合实验第140页
        6.2.6 生存率的测定第140页
    6.3 结果与讨论第140-148页
        6.3.1 drHerA的C端能和drRecJ的C端直接互作第140-142页
        6.3.2 drHerA能促进drRecJ的DNA酶切活性和结合活性第142-144页
        6.3.3 drNurA能抑制drHerA对drRecJ酶切和结合活性的激活作用第144-146页
        6.3.4 drNurA和drRecJ相悖的表型暗示着两者在体内有相左的功能第146-147页
        6.3.5 drRecJ和drNurA两条DNA resection途径的模式图第147-148页
    6.4 本章小结第148-150页
总结与展望第150-153页
附录第153-161页
攻读博士学位期间发表的论文第161-162页
参考文献第162-176页

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