| 致谢 | 第4-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-32页 |
| 1.1 杂种优势研究进展 | 第11-17页 |
| 1.1.1 玉米株高杂种优势研究的重要性 | 第11页 |
| 1.1.2 杂种优势遗传机理研究进展 | 第11-15页 |
| 1.1.3 玉米抗倒伏相关性状的研究进展 | 第15页 |
| 1.1.4 株高的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2 microRNA的研究进展 | 第17-28页 |
| 1.2.1 microRNA的概念 | 第17页 |
| 1.2.2 miRNA的特点 | 第17-18页 |
| 1.2.3 microRNA的生物合成过程 | 第18-19页 |
| 1.2.4 microRNA介导的基因表达调控模式 | 第19-22页 |
| 1.2.5 microRNA在植物发育过程中的研究进展 | 第22-23页 |
| 1.2.6 植物microRNA的研究方法 | 第23-27页 |
| 1.2.6.1 确定新mi RNA的一般步骤 | 第23-24页 |
| 1.2.6.2 高通量测序 | 第24-25页 |
| 1.2.6.3 生物信息学在植物mi RNA研究中的应用 | 第25-26页 |
| 1.2.6.4 mi RNA定量检测 | 第26-27页 |
| 1.2.7 玉米microRNA的研究及其与杂种优势的关系 | 第27-28页 |
| 1.3 蛋白质组学研究进展 | 第28-32页 |
| 1.3.1 蛋白质组学研究技术 | 第29-32页 |
| 1.3.1.1 双向电泳技术(li) | 第29页 |
| 1.3.1.2 质谱分析 | 第29-30页 |
| 1.3.1.3 蛋白质组学研究中的生物信息学(Bioinformatics) | 第30页 |
| 1.3.1.4 蛋白质定量技术 | 第30-32页 |
| 第二章 玉米穗下节间长杂种优势的mi RNA调控机制研究 | 第32-84页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第32-41页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第32页 |
| 2.1.2 主要的仪器设备和耗材 | 第32页 |
| 2.1.3 生化试剂 | 第32-33页 |
| 2.1.4 常用溶液的配制 | 第33页 |
| 2.1.5 使用的数据库和在线工具 | 第33页 |
| 2.1.6 玉米材料的处理 | 第33-34页 |
| 2.1.7 取样 | 第34页 |
| 2.1.8 实验材料总RNA的提取 | 第34-36页 |
| 2.1.8.1 实验用品的前处理 | 第34-35页 |
| 2.1.8.2 试验样品总RNA的提取 | 第35页 |
| 2.1.8.3 RNA质量检测 | 第35-36页 |
| 2.1.9 mi RNA测序与数据分析 | 第36-37页 |
| 2.1.9.1 Solexa测序原理及流程 | 第36页 |
| 2.1.9.2 数据分析 | 第36-37页 |
| 2.1.10 mi RNA引物 | 第37页 |
| 2.1.11 mi RNA靶基因的预测 | 第37-38页 |
| 2.1.12 RNA纯化与反转录 | 第38页 |
| 2.1.13 c DNA第一链的合成 | 第38-40页 |
| 2.1.14 引物特异性鉴定 | 第40页 |
| 2.1.15 实时定量PCR对mi RNA和mi RNA候选靶基因进行相对定量分析 | 第40-41页 |
| 2.2 结果与分析 | 第41-80页 |
| 2.2.1 玉米穗下不同节间长的杂种优势分析 | 第41-43页 |
| 2.2.2 总RNA的提取和质量检测 | 第43-44页 |
| 2.2.3 在杂交种和其亲本中检测到的Micro RNA | 第44-50页 |
| 2.2.4 玉米穗下节间mi RNA的表达模式分析 | 第50页 |
| 2.2.5 保守mi RNA靶基因的预测 | 第50-77页 |
| 2.2.6 玉米穗下节间中新发现的mi RNA | 第77-78页 |
| 2.2.7 部分mi RNA及其靶基因的表达谱分析 | 第78-80页 |
| 2.3 讨论与结论 | 第80-84页 |
| 2.3.1 高通量测序技术的可行性 | 第80-81页 |
| 2.3.2 玉米杂种优势相关的mi RNA | 第81-82页 |
| 2.3.3 靶基因涉及的玉米穗下节间伸长的代谢调控途径 | 第82-84页 |
| 第三章 玉米穗下节间杂种优势的蛋白质组学分析 | 第84-111页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第84-91页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第84页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第84页 |
| 3.1.3 试剂和溶液配制 | 第84-86页 |
| 3.1.3.1 试剂 | 第84页 |
| 3.1.3.2 蛋白提取和电泳所需溶液配制 | 第84-86页 |
| 3.1.3.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳凝胶的配置 | 第86页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第86-91页 |
| 3.1.4.1 试验材料的处理 | 第86页 |
| 3.1.4.2 蛋白质的提取 | 第86-87页 |
| 3.1.4.3 蛋白质样品浓度测定 | 第87-88页 |
| 3.1.4.4 第一向等电聚焦电泳 | 第88-89页 |
| 3.1.4.5 第二向SDS-PAGE电泳 | 第89-90页 |
| 3.1.4.6 凝胶染色 | 第90页 |
| 3.1.4.7 凝胶图像分析、蛋白质点的胶内酶解和串联质谱分析 | 第90-91页 |
| 3.1.4.8 玉米蛋白质的表达模式 | 第91页 |
| 3.2 结果与分析 | 第91-105页 |
| 3.2.1 差异蛋白的筛选 | 第91-92页 |
| 3.2.2 差异蛋白点的的表达模式分析 | 第92-98页 |
| 3.2.3 玉米杂交种及其亲本第8节间差异蛋白的功能分析 | 第98-105页 |
| 3.3 讨论部分 | 第105-110页 |
| 3.3.1 样品的取用和方法的可行性 | 第105页 |
| 3.3.2 代谢通路的完善是株高杂种优势形成的机理之一 | 第105-108页 |
| 3.3.3 与激素诱导基因表达相关的差异蛋白 | 第108-109页 |
| 3.3.4 具有特殊表达模式的蛋白点 | 第109-110页 |
| 3.4 结论 | 第110-111页 |
| 第四章 结论 | 第111-113页 |
| 4.1 玉米穗下节间长的杂种优势表现 | 第111页 |
| 4.2 miRNA与节间伸长杂种优势的关系 | 第111页 |
| 4.3 玉米穗下节间长杂种优势的蛋白质组学分析 | 第111-113页 |
| ABSTRACT | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第115-132页 |
