| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1. 引言 | 第10-21页 |
| 1.1 研究背景 | 第10页 |
| 1.2 巴西橡胶树生物学习性及胶乳合成途径 | 第10-12页 |
| 1.2.1 巴西橡胶树形态特征及基本习性 | 第10-11页 |
| 1.2.2 巴西橡胶树乳管的分化及其影响因素 | 第11页 |
| 1.2.3 胶乳的生物合成 | 第11-12页 |
| 1.3 植物茉莉酸信号途径 | 第12-17页 |
| 1.3.1 茉莉酸极其衍生物的理化性质 | 第12-13页 |
| 1.3.2 茉莉酸的生物合成 | 第13-14页 |
| 1.3.3 茉莉酸的信号转导途径 | 第14-15页 |
| 1.3.4 JAZ蛋白 | 第15-16页 |
| 1.3.5 MYC转录因子 | 第16页 |
| 1.3.6 茉莉酸在橡胶生物合成中的作用 | 第16-17页 |
| 1.4 利用酵母杂交技术研究橡胶茉莉酸信号通路 | 第17-20页 |
| 1.4.1 酵母双杂技术概述 | 第17-18页 |
| 1.4.2 酵母单杂技术 | 第18页 |
| 1.4.3 利用酵母双杂交技术筛选橡胶HbJAZ1基因的互作蛋白 | 第18-19页 |
| 1.4.4 橡胶HbJAZ1基因的互作蛋白的初步分析 | 第19-20页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第20页 |
| 1.6 技术路线 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-39页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第21页 |
| 2.1.2 菌株 | 第21页 |
| 2.1.3 载体 | 第21页 |
| 2.1.4 试剂及工具 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-39页 |
| 2.2.1 巴西橡胶HbJAZ1互作蛋白的cDNA全长克隆 | 第22-26页 |
| 2.2.2 HbJAZ1与五个目标蛋白的酵母双杂一对一互作验证 | 第26-31页 |
| 2.2.3 橡胶的HbMYC3的亚细胞定位分析 | 第31-32页 |
| 2.2.4 橡橡胶HbMYC3基因的差异表达分析 | 第32-34页 |
| 2.2.5 橡胶HbMYC3自转录活性分析 | 第34-36页 |
| 2.2.6 橡橡胶HbMYC3蛋白的酵母双杂分析 | 第36页 |
| 2.2.7 巴西橡胶HbMYC3的酵母单杂分析 | 第36-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-61页 |
| 3.1 HbJAZ1与5个目标蛋白的互作验证 | 第39-42页 |
| 3.1.1 HbJAZ1互作的5个目标蛋白的cDNA克隆 | 第39-40页 |
| 3.1.2 构建HbJAZ1互作的5个目标蛋白的pGADT7载体 | 第40页 |
| 3.1.3 酵母感受态的高效转化 | 第40-41页 |
| 3.1.4 HbJAZ1与5个目标蛋白的互作验证 | 第41-42页 |
| 3.2 橡胶HbMYC3蛋白的功能鉴定 | 第42-61页 |
| 3.2.1 橡胶HbMYC3蛋白序列及结构域分析 | 第42-44页 |
| 3.2.2 HbMYC3与HbJAZs的酵母双杂互作实验 | 第44-45页 |
| 3.2.3 鉴定HbMYC3蛋白的转录因子特征 | 第45-49页 |
| 3.2.4 巴西橡胶HbMYC3基因的差异表达分析 | 第49-50页 |
| 3.2.5 橡胶HbMYC3与其他HbMYC家族蛋白的互作分析 | 第50-55页 |
| 3.2.6 橡胶HbMYC3的酵母单杂分析 | 第55-61页 |
| 4 讨论 | 第61-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 附录 | 第67-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
