| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-48页 |
| 1.1 金黄色葡萄球菌概述 | 第12-26页 |
| 1.1.1 金黄色葡萄球菌简介 | 第12-13页 |
| 1.1.2 金黄色葡萄球菌基因组 | 第13-16页 |
| 1.1.3 金黄色葡萄球菌的毒力因子 | 第16-19页 |
| 1.1.4 金黄色葡萄球菌毒力因子的调控 | 第19-23页 |
| 1.1.5 金黄色葡萄球菌耐药性及形成机制 | 第23-26页 |
| 1.2 金黄色葡萄球菌的生物被膜 | 第26-35页 |
| 1.2.1 生物被膜的基本结构和组成 | 第26-28页 |
| 1.2.2 生物被膜的发育过程 | 第28-31页 |
| 1.2.3 生物被膜形成的调控 | 第31-33页 |
| 1.2.4 生物被膜的抗性和治疗 | 第33-35页 |
| 1.3 细菌群体感应概述 | 第35-48页 |
| 1.3.1 引言 | 第35页 |
| 1.3.2 种内群体感应系统 | 第35-39页 |
| 1.3.3 种间群体感应系统 | 第39-43页 |
| 1.3.4 细菌内杂合群体感应系统 | 第43-48页 |
| 第二章 实验材料及方法 | 第48-68页 |
| 2.1 实验材料 | 第48-56页 |
| 2.1.1 实验所用引物、质粒及菌株 | 第48-53页 |
| 2.1.2 实验所用试剂及培养基 | 第53-56页 |
| 2.2 试验方法 | 第56-68页 |
| 2.2.1 质粒的构建 | 第56-58页 |
| 2.2.2 大肠杆菌相关实验方法 | 第58页 |
| 2.2.3 金葡菌相关实验方法 | 第58-61页 |
| 2.2.4 金葡菌基因突变菌株的构建 | 第61-62页 |
| 2.2.5 金葡菌的相关表型检测 | 第62-64页 |
| 2.2.6 蛋白表达纯化及体外实验 | 第64-66页 |
| 2.2.7 DNA亲和色谱鉴定新的DNA结合蛋白 | 第66-67页 |
| 2.2.8 统计学分析方法 | 第67-68页 |
| 第三章 实验结果及其分析 | 第68-88页 |
| 3.1 SaaR的功能预测 | 第68-69页 |
| 3.2 saaR突变株和luxS saaR双突变株的构建 | 第69-70页 |
| 3.3 LuxS/AI-2系统调控金葡菌NCTC8325菌株PIA依赖的生物被膜形成 | 第70-71页 |
| 3.4 LuxS/AI-2系统以AI-2剂量依赖的方式抑制SaaR的表达 | 第71-73页 |
| 3.4.1 saaR的时相表达 | 第71-72页 |
| 3.4.2 LuxS/AI-2系统抑制saaR的表达 | 第72-73页 |
| 3.5 LuxS/AI-2系统通过抑制saaR的转录调控生物被膜形成 | 第73-75页 |
| 3.5.1 SaaR促进金葡菌NCTC8325生物被膜的形成 | 第73-74页 |
| 3.5.2 SaaR处于LuxS/AI-2调控生物被膜通路的下游 | 第74-75页 |
| 3.6 流动相中LuxS/AI-2系统和SaaR对生物被膜形成的调控 | 第75-77页 |
| 3.7 SaaR调控毒力相关基因 | 第77-78页 |
| 3.8 SaaR正调控自己的表达 | 第78-80页 |
| 3.9 SaaR与AI-2结合的相关实验结果 | 第80-81页 |
| 3.10 SaaR的调控蛋白鉴定及功能探究 | 第81-88页 |
| 3.10.1 DNA pull-down的方法鉴定SaaR的调控蛋白 | 第81-83页 |
| 3.10.2 MgrA能够结合saaR启动子 | 第83页 |
| 3.10.3 mgrA基因的敲除和功能研究 | 第83-88页 |
| 第四章 讨论 | 第88-92页 |
| 4.1 LuxS/AI-2系统调控金葡菌生物被膜形成的讨论 | 第88-89页 |
| 4.2 SaaR作为AI-2受体的可能性 | 第89-91页 |
| 4.3 SaaR调控毒力相关基因的讨论 | 第91页 |
| 4.4 MgrA调控生物被膜的讨论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-108页 |
| 附录 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110-112页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第112页 |
