| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第15-38页 |
| 1.1 骨组织修复材料 | 第15-19页 |
| 1.1.1 骨组织修复材料的特性 | 第15页 |
| 1.1.2 骨组织修复材料的分类 | 第15-18页 |
| 1.1.3 细胞因子对骨再生的影响 | 第18-19页 |
| 1.2 钛及钛合金的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.2.1 钛及钛合金发展及性能 | 第19-21页 |
| 1.2.2 钛及钛合金的生物医学应用 | 第21-22页 |
| 1.2.3 钛及钛合金存在的问题 | 第22-23页 |
| 1.3 钛表面改性 | 第23-31页 |
| 1.3.1 阳极氧化法 | 第23-27页 |
| 1.3.2 层层自组装技术 | 第27-31页 |
| 1.4 MSCs的分化 | 第31-36页 |
| 1.4.1 MSCs简介 | 第31页 |
| 1.4.2 影响干细胞分化的因素 | 第31-36页 |
| 1.5 研究目的和研究内容 | 第36-38页 |
| 第2章 不同管径纳米管层携载OGP及其对成骨细胞的影响 | 第38-49页 |
| 2.1 引言 | 第38-39页 |
| 2.2 材料与方法 | 第39-40页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第39页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 2.3 材料表征 | 第40-42页 |
| 2.3.1 扫描电子显微镜 | 第40页 |
| 2.3.2 X射线衍射 | 第40页 |
| 2.3.3 接触角测量 | 第40-41页 |
| 2.3.4 X射线光电子能谱 | 第41页 |
| 2.3.5 细胞实验 | 第41-42页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第42-48页 |
| 2.4.1 纳米管形貌及断面元素分析 | 第42-43页 |
| 2.4.2 表面结构分析 | 第43页 |
| 2.4.3 试样表面接触角 | 第43-44页 |
| 2.4.4 XPS分析 | 第44-45页 |
| 2.4.5 Alamar Blue检测 | 第45-46页 |
| 2.4.6 ALP检测 | 第46-47页 |
| 2.4.7 细胞形态 | 第47-48页 |
| 2.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第3章 纳米管层携载不同诱导因子及其对MSCs成骨分化的研究 | 第49-63页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 材料与方法 | 第50-51页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第50页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 3.3 材料表征 | 第51-53页 |
| 3.3.1 扫描电子显微镜 | 第51页 |
| 3.3.2 接触角测量 | 第51页 |
| 3.3.3 傅立叶红外光谱 | 第51页 |
| 3.3.4 细胞实验 | 第51-53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-61页 |
| 3.4.1 表面形貌结果 | 第53-54页 |
| 3.4.2 接触角分析 | 第54页 |
| 3.4.3 FTIR分析 | 第54-55页 |
| 3.4.4 Alamar Blue检测 | 第55-56页 |
| 3.4.5 细胞形态 | 第56-58页 |
| 3.4.6 ALP检测 | 第58-59页 |
| 3.4.7 PCR检测 | 第59-60页 |
| 3.4.8 Col-1和OPN免疫荧光染色 | 第60-61页 |
| 3.4.9 钙含量及钙结节检测 | 第61页 |
| 3.5 本章小结 | 第61-63页 |
| 第4章 携载BMP-2的不同管径纳米管层对MSCs向成骨分化的影响 | 第63-76页 |
| 4.1 引言 | 第63页 |
| 4.2 材料与方法 | 第63-64页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第63页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第63-64页 |
| 4.3 材料表征 | 第64-65页 |
| 4.3.1 扫描电镜分析 | 第64页 |
| 4.3.2 接触角测量 | 第64页 |
| 4.3.3 原子力显微镜 | 第64页 |
| 4.3.4 X射线光电子能谱 | 第64页 |
| 4.3.5 BMP-2释放 | 第64页 |
| 4.3.6 细胞实验 | 第64-65页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第65-75页 |
| 4.4.1 纳米管断面形貌及元素分析 | 第65-66页 |
| 4.4.2 接触角和表面能分析 | 第66页 |
| 4.4.3 AFM分析 | 第66-67页 |
| 4.4.4 XPS分析 | 第67-68页 |
| 4.4.5 BMP-2释放曲线 | 第68页 |
| 4.4.6 Alamar Blue检测 | 第68-69页 |
| 4.4.7 细胞形态 | 第69-71页 |
| 4.4.8 MSCs的迁移能力 | 第71-72页 |
| 4.4.9 ALP检测 | 第72-73页 |
| 4.4.10 PCR检测 | 第73页 |
| 4.4.11 Col-1和OPN免疫荧光染色 | 第73-74页 |
| 4.4.12 钙结节及钙含量检测 | 第74-75页 |
| 4.5 本章小结 | 第75-76页 |
| 第5章 纳米管表面组装层的构建及其对MSCs成骨能力的研究 | 第76-92页 |
| 5.1 引言 | 第76-77页 |
| 5.2 材料与方法 | 第77-78页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第77页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第77-78页 |
| 5.3 材料表征 | 第78-79页 |
| 5.3.1 多层膜扫描电镜观察 | 第78页 |
| 5.3.2 接触角测量 | 第78页 |
| 5.3.3 傅立叶红外光谱 | 第78页 |
| 5.3.4 X射线光电子能谱 | 第78页 |
| 5.3.5 BMP-2释放 | 第78页 |
| 5.3.6 多层膜降解 | 第78-79页 |
| 5.3.7 细胞实验 | 第79页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第79-91页 |
| 5.4.1 多层膜形貌分析 | 第79-81页 |
| 5.4.2 接触角检测 | 第81-82页 |
| 5.4.3 FTIR分析 | 第82-83页 |
| 5.4.4 XPS分析 | 第83-85页 |
| 5.4.5 BMP-2释放曲线 | 第85-86页 |
| 5.4.6 多层膜降解结果 | 第86-87页 |
| 5.4.7 Alamar Blue检测 | 第87页 |
| 5.4.8 细胞形貌 | 第87-88页 |
| 5.4.9 ALP检测 | 第88-89页 |
| 5.4.10 PCR检测 | 第89-90页 |
| 5.4.11 Col-1和OPN免疫荧光染色 | 第90-91页 |
| 5.5 本章小结 | 第91-92页 |
| 结论 | 第92-93页 |
| 本文研究展望 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-120页 |
| 攻读博士学位期间已发表及待发表的论文 | 第120页 |
