| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 竹叶提取物主要成分的研究概况 | 第15-16页 |
| 1.1.1 黄酮类化合物 | 第15-16页 |
| 1.1.2 特种氨基酸 | 第16页 |
| 1.1.3 酚酸类化合物 | 第16页 |
| 1.2 竹叶提取物及其黄酮类成分抗癌活性的研究概况 | 第16-18页 |
| 1.2.1 竹叶提取物 | 第16-17页 |
| 1.2.2 荭草苷 | 第17页 |
| 1.2.3 异荭草苷 | 第17-18页 |
| 1.2.4 木犀草素 | 第18页 |
| 1.3 杜仲提取物主要成分的研究概况 | 第18-19页 |
| 1.3.1 环烯醚萜类 | 第18页 |
| 1.3.2 木质素类 | 第18-19页 |
| 1.3.3 苯丙素类 | 第19页 |
| 1.4 杜仲提取物及其主要成分的抗癌活性研究概况 | 第19-20页 |
| 1.4.1 杜仲提取物 | 第19页 |
| 1.4.2 绿原酸 | 第19页 |
| 1.4.3 京尼平苷酸 | 第19页 |
| 1.4.4 咖啡酸 | 第19-20页 |
| 1.4.5 杜仲多糖 | 第20页 |
| 1.5 抗血管生成的研究概况 | 第20-21页 |
| 1.6 用于评价抗肿瘤和抗血管生成活性的细胞模型 | 第21-22页 |
| 1.6.1 用于评价抗肿瘤活性的细胞模型 | 第21页 |
| 1.6.2 用于评价抗血管生成细胞模型 | 第21-22页 |
| 1.7 细胞增殖的测定方法 | 第22-23页 |
| 1.7.1 MTT检测法 | 第22页 |
| 1.7.2 胸腺嘧啶核苷(3H-TdR)渗入法 | 第22页 |
| 1.7.3 Brdu检测法 | 第22页 |
| 1.7.4 羟基荧光素二醋酸盐琥珀酰亚胺脂(CFSE)检测法 | 第22-23页 |
| 1.8 细胞凋亡的检测方法 | 第23-24页 |
| 1.8.1 形态学观察方法 | 第23页 |
| 1.8.2 流式细胞仪分析 | 第23-24页 |
| 1.8.3 DNA凝胶电泳 | 第24页 |
| 1.9 本课题研究的目的、意义、内容及路线 | 第24-28页 |
| 1.9.1 研究的目的及意义 | 第24-25页 |
| 1.9.2 研究的内容 | 第25页 |
| 1.9.3 本文主要创新点 | 第25-26页 |
| 1.9.4 研究路线 | 第26-28页 |
| 2 竹叶提取物和杜仲提取物主要活性成分及含量的测定 | 第28-34页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-30页 |
| 2.2.1 主要原料及试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 实验仪器及设备 | 第29页 |
| 2.2.3 竹叶提取物主要成分和含量的测定 | 第29页 |
| 2.2.4 杜仲提取物主要成分和含量的测定 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-33页 |
| 2.3.1 竹叶提取物主要成分和含量的测定结果 | 第30-31页 |
| 2.3.2 杜仲提取物主要成分和含量的测定结果 | 第31-33页 |
| 2.4 小结 | 第33-34页 |
| 3 竹叶提取物和杜仲提取物体外抗癌活性研究 | 第34-44页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-38页 |
| 3.2.1 主要原料及试剂 | 第34页 |
| 3.2.2 实验仪器及设备 | 第34页 |
| 3.2.3 细胞株 | 第34-35页 |
| 3.2.4 主要试剂的配制 | 第35页 |
| 3.2.5 HCT116细胞的体外培养 | 第35-37页 |
| 3.2.6 Hela细胞的体外培养 | 第37页 |
| 3.2.7 竹叶提取物和杜仲提取物及顺铂对癌细胞增殖抑制作用的研究 | 第37页 |
| 3.2.8 统计学处理 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-42页 |
| 3.3.1 竹叶提取物和杜仲提取物及顺铂对HCT116细胞作用的结果 | 第38-40页 |
| 3.3.2 竹叶提取物和杜仲提取物对Hela细胞作用的结果 | 第40-42页 |
| 3.4 小结 | 第42-44页 |
| 4 竹叶提取物和杜仲提取物中单一成分体外抗癌活性研究 | 第44-56页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验部分 | 第44-47页 |
| 4.2.1 主要原料及试剂 | 第44页 |
| 4.2.2 实验仪器及设备 | 第44-45页 |
| 4.2.3 细胞株 | 第45页 |
| 4.2.4 主要试剂的配制 | 第45页 |
| 4.2.5 HCT116细胞的体外培养 | 第45页 |
| 4.2.6 Hela细胞的体外培养 | 第45-46页 |
| 4.2.7 两种提取物中单一成分对癌细胞增殖抑制作用的研究 | 第46-47页 |
| 4.2.8 统计学处理 | 第47页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第47-55页 |
| 4.3.1 黄酮类单一成分对HCT116细胞作用的结果 | 第47-49页 |
| 4.3.2 酚酸类单一成分对HCT116细胞作用的结果 | 第49-51页 |
| 4.3.3 黄酮类单一成分对Hela细胞作用的结果 | 第51-53页 |
| 4.3.4 酚酸类单一成分对Hela细胞作用的结果 | 第53-55页 |
| 4.4 小结 | 第55-56页 |
| 5 提取物及其主要成分和顺铂抗血管生成活性研究 | 第56-68页 |
| 5.1 引言 | 第56页 |
| 5.2 竹叶提取物和杜仲提取物及顺铂抗血管生成活性研究 | 第56-58页 |
| 5.2.1 主要原料及试剂 | 第56页 |
| 5.2.2 实验仪器及设备 | 第56页 |
| 5.2.3 细胞株 | 第56-57页 |
| 5.2.4 主要试剂的配制 | 第57页 |
| 5.2.5 HUVEC细胞的体外培养 | 第57页 |
| 5.2.6 竹叶提取物和杜仲提取物及顺铂对HUVEC细胞作用的研究 | 第57-58页 |
| 5.2.7 统计学处理 | 第58页 |
| 5.3 提取物中主要单一成分抗血管生成活性研究 | 第58-60页 |
| 5.3.1 主要原料及试剂 | 第58页 |
| 5.3.2 实验仪器及设备 | 第58页 |
| 5.3.3 细胞株 | 第58页 |
| 5.3.4 主要试剂的配制 | 第58-59页 |
| 5.3.5 HUVEC细胞的体外培养 | 第59页 |
| 5.3.6 提取物中主要单一成分对HUVEC细胞增殖作用的研究 | 第59-60页 |
| 5.3.7 统计学处理 | 第60页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第60-65页 |
| 5.4.1 竹叶提取物和杜仲提取物及顺铂对HUVEC细胞作用的结果 | 第60-61页 |
| 5.4.2 黄酮类单一成分对HUVEC细胞增殖作用的结果 | 第61-63页 |
| 5.4.3 酚酸类单一成分对HUVEC细胞增殖作用的结果 | 第63-65页 |
| 5.5 小结 | 第65-68页 |
| 6 两种提取物及异牡荆苷对HCT116细胞凋亡作用的研究 | 第68-74页 |
| 6.1 引言 | 第68页 |
| 6.2 实验部分 | 第68-70页 |
| 6.2.1 主要原料及试剂 | 第68页 |
| 6.2.2 主要仪器及设备 | 第68-69页 |
| 6.2.3 细胞株 | 第69页 |
| 6.2.4 主要试剂的配制 | 第69页 |
| 6.2.5 HCT116细胞的体外培养 | 第69页 |
| 6.2.6 两种提取物及异牡荆苷对HCT116细胞凋亡作用的研究 | 第69页 |
| 6.2.7 统计学处理 | 第69-70页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第70-72页 |
| 6.3.1 竹叶提取物对HCT116细胞凋亡作用的结果 | 第70页 |
| 6.3.2 杜仲提取物对HCT116细胞凋亡作用的结果 | 第70-71页 |
| 6.3.3 异牡荆苷对HCT116细胞凋亡作用的结果 | 第71-72页 |
| 6.4 小结 | 第72-74页 |
| 7 结论与展望 | 第74-78页 |
| 7.1 结论 | 第74-76页 |
| 7.2 展望 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-86页 |
| 攻读硕士学位期间的主要学术成果 | 第86-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
