| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-16页 |
| 1.1 植物光合作用概述 | 第8-9页 |
| 1.2 光氧化对植物影响的研究进展 | 第9-11页 |
| 1.2.1 植物的光氧化以及防御机制 | 第9-10页 |
| 1.2.2 光氧化对叶片色素含量和光合速率的影响 | 第10-11页 |
| 1.2.3 光氧化对叶片PSⅡ结构和电子传递的影响 | 第11页 |
| 1.2.4 光氧化对叶片光合酶的影响 | 第11页 |
| 1.3 植物蛋白质组学的研究进展 | 第11-14页 |
| 1.3.1 植物非生物胁迫蛋白质组学 | 第12-13页 |
| 1.3.2 蛋白质组学的研究方法 | 第13-14页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第14-16页 |
| 第2章 水稻光氧化突变体812HS生理特性的研究 | 第16-26页 |
| 2.1 材料与方法 | 第16-18页 |
| 2.1.1 材料与采样 | 第16页 |
| 2.1.2 叶绿素的测定 | 第16页 |
| 2.1.3 PSⅡ光化学效率的测定 | 第16-17页 |
| 2.1.4 粗酶液的制备 | 第17页 |
| 2.1.5 SOD活性的测定 | 第17页 |
| 2.1.6 CAT活性的测定 | 第17页 |
| 2.1.7 POD活性的测定 | 第17页 |
| 2.1.8 可溶性蛋白含量的测定 | 第17页 |
| 2.1.9 O_2~-生成速率的测定 | 第17-18页 |
| 2.1.10 H_2O_2含量的测定 | 第18页 |
| 2.1.11 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第18页 |
| 2.2 结果与分析 | 第18-24页 |
| 2.2.1 叶色表型的变化 | 第18页 |
| 2.2.2 叶绿素含量的变化 | 第18-20页 |
| 2.2.3 PSⅡ光化学效率的变化 | 第20-21页 |
| 2.2.4 抗氧化酶活性的变化 | 第21-22页 |
| 2.2.5 可溶性蛋白含量的变化 | 第22-23页 |
| 2.2.6 叶片活性氧含量的变化 | 第23-24页 |
| 2.2.7 MDA含量的变化 | 第24页 |
| 2.3 讨论 | 第24-26页 |
| 第3章 突变体812HS叶片差异蛋白组学分析 | 第26-43页 |
| 3.1 实验材料 | 第26页 |
| 3.1.1 材料选取 | 第26页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-33页 |
| 3.2.1 试剂配制 | 第26-29页 |
| 3.2.2 蛋白样品制备 | 第29-30页 |
| 3.2.3 双向电泳 | 第30-32页 |
| 3.2.4 图像采集与分析 | 第32-33页 |
| 3.2.5 质谱鉴定 | 第33页 |
| 3.3 实验结果 | 第33-39页 |
| 3.3.1 蛋白质样品的浓度测定 | 第33-34页 |
| 3.3.2 向电泳图谱 | 第34-35页 |
| 3.3.3 差异蛋白点的质谱鉴定 | 第35-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-43页 |
| 3.4.1 双向电泳图谱分析 | 第39-40页 |
| 3.4.2 差异蛋白的分析和讨论 | 第40-43页 |
| 第4章 总结和展望 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |