| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 文献综述 | 第11-26页 |
| 1. PI3K/AKT信号通路及其在血管生成中的作用 | 第11-16页 |
| 1.1 PI3K/Akt信号通路的组成与活化 | 第11-13页 |
| 1.2 PI3K/Akt信号通路对细胞增殖的调节 | 第13-14页 |
| 1.3 PI3K/Akt信号通路对细胞凋亡的调节 | 第14页 |
| 1.4 PI3K/Akt信号通路对细胞迁移的调节 | 第14页 |
| 1.5 PI3K/Akt信号通路对血管生成的调节 | 第14-16页 |
| 2. 砷制剂对血管生成的双重作用 | 第16-20页 |
| 2.1 砷制剂的应用现状 | 第16页 |
| 2.2 砷制剂对血管生成的促进作用 | 第16-18页 |
| 2.3 砷制剂对肿瘤血管生成的抑制作用 | 第18-20页 |
| 2.3.1 诱导细胞凋亡 | 第18页 |
| 2.3.2 抑制能量代谢和干扰糖酵解 | 第18-19页 |
| 2.3.3 降低血管生成因子的表达 | 第19-20页 |
| 参考文献 | 第20-26页 |
| 第一章 PI3K/AKT信号在洛克沙肿体外促血管内皮细胞生长及管形成中的调节机制 | 第26-39页 |
| 1. 材料与方法 | 第26-30页 |
| 1.1 材料 | 第26-28页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 1.1.2 主要药品及试剂 | 第26-27页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第27页 |
| 1.1.4 试剂配制 | 第27-28页 |
| 1.2 方法 | 第28-30页 |
| 1.2.1 大鼠内皮细胞培养与分组处理 | 第28-29页 |
| 1.2.2 MTT试验 | 第29页 |
| 1.2.3 BrdU-免疫荧光 | 第29页 |
| 1.2.4 划痕试验 | 第29-30页 |
| 1.2.5 管形成试验 | 第30页 |
| 1.2.6 Western Blot分析相关蛋白的表达 | 第30页 |
| 1.2.7 数据处理 | 第30页 |
| 2. 结果 | 第30-36页 |
| 2.1 对内皮细胞活力的影响 | 第30-31页 |
| 2.2 对内皮细胞增殖能力的影响 | 第31-32页 |
| 2.3 对内皮细胞迁移能力的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 对内皮细胞体外管形成的影响 | 第33-35页 |
| 2.5 对PI3K/Akt通路活化的影响 | 第35页 |
| 2.6 对VEGF表达的影响 | 第35-36页 |
| 3. 结论与讨论 | 第36-39页 |
| 第二章 PI3K/AKT信号在洛克沙胂促进小鼠黑色素移植瘤生长中的作用 | 第39-48页 |
| 1. 材料与方法 | 第39-41页 |
| 1.1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第39页 |
| 1.1.2 主要药品与试剂 | 第39页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第39-40页 |
| 1.1.4 试剂配置 | 第40页 |
| 1.2 方法 | 第40-41页 |
| 1.2.1 细胞系的培养 | 第40页 |
| 1.2.2 黑色素瘤模型的建立 | 第40页 |
| 1.2.3 药物的给予与剂量分组 | 第40-41页 |
| 1.2.4 肿瘤生长的评价 | 第41页 |
| 1.2.5 组织病理学检查 | 第41页 |
| 1.2.6 VEGF免疫组化 | 第41页 |
| 1.2.7 Western Blot分析相关蛋白的表达 | 第41页 |
| 1.2.8 数据处理 | 第41页 |
| 2. 结果 | 第41-45页 |
| 2.1 黑色素移植瘤模型一般情况 | 第41-42页 |
| 2.2 洛克沙胂对移植瘤生长的影响 | 第42页 |
| 2.3 洛克沙胂对肿瘤形态的影响 | 第42-44页 |
| 2.4 洛克沙胂对肿瘤PI3K/Akt通路的影响 | 第44页 |
| 2.5 洛克沙胂对肿瘤VEGF表达的影响 | 第44-45页 |
| 3. 结论与讨论 | 第45-48页 |
| 全文结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 硕士阶段发表论文情况 | 第54-55页 |
