| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-23页 |
| 1.1 猴头菇 | 第12-14页 |
| 1.1.1 猴头菇的形态特征 | 第12页 |
| 1.1.2 猴头菇的营养成分和药用价值 | 第12页 |
| 1.1.3 猴头菇的生长条件 | 第12页 |
| 1.1.4 猴头菇的活性成分 | 第12-13页 |
| 1.1.5 猴头菇的开发应用 | 第13-14页 |
| 1.2 多糖及真菌多糖 | 第14-23页 |
| 1.2.1 多糖概述 | 第14页 |
| 1.2.1.1 多糖简介 | 第14页 |
| 1.2.1.2 多糖的构效关系 | 第14页 |
| 1.2.1.3 多糖的量效关系 | 第14页 |
| 1.2.2 多糖的研究现状 | 第14-17页 |
| 1.2.2.1 多糖的结构研究 | 第15页 |
| 1.2.2.2 多糖一级结构的研究方法 | 第15-16页 |
| 1.2.2.3 多糖高级结构的研究方法 | 第16-17页 |
| 1.2.3 真菌多糖的提取方法 | 第17页 |
| 1.2.4 多糖的分离纯化 | 第17-18页 |
| 1.2.5 多糖的生物学活性 | 第18-20页 |
| 1.2.5.1 抗肿瘤活性 | 第18-19页 |
| 1.2.5.2 抗病毒作用 | 第19页 |
| 1.2.5.3 降血糖和降血脂作用 | 第19页 |
| 1.2.5.4 抗炎作用 | 第19页 |
| 1.2.5.5 抗补体作用 | 第19-20页 |
| 1.2.5.6 免疫调节作用 | 第20页 |
| 1.2.5.7 抗氧化作用 | 第20页 |
| 1.2.6 肝损伤 | 第20-23页 |
| 1.2.6.1 肝损伤机制 | 第20-21页 |
| 1.2.6.2 肝损伤研究 | 第21-22页 |
| 1.2.6.3 食用菌多糖与肝损伤 | 第22-23页 |
| 1.3 本课题的目的和意义 | 第23页 |
| 2 材料和方法 | 第23-33页 |
| 2.1 实验菌种 | 第23页 |
| 2.2 培养基和培养条件 | 第23-24页 |
| 2.3 主要设备和试剂 | 第24-26页 |
| 2.3.1 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.3.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.4 实验方法 | 第26-33页 |
| 2.4.1 猴头菇发酵培养 | 第26页 |
| 2.4.2 猴头多糖的制备 | 第26页 |
| 2.4.3 猴头菇多糖的测定 | 第26-27页 |
| 2.4.4 猴头菇多糖EPS和IPS分离纯化 | 第27页 |
| 2.4.5 猴头菇多糖的结构分析 | 第27-28页 |
| 2.4.5.1 多糖的红外光谱分析 | 第27-28页 |
| 2.4.5.2 高效气相色谱法测定多糖中的单糖组成和摩尔比 | 第28页 |
| 2.4.6 猴头菇多糖的体外抗氧化活性测定 | 第28-29页 |
| 2.4.6.1 清除DPPH | 第28-29页 |
| 2.4.6.2 还原力测定——普鲁士蓝法 | 第29页 |
| 2.4.6.3 清除羟基自由基——邻二氮菲-Fe~（2+）氧化法 | 第29页 |
| 2.4.7 猴头菇多糖的保肝护肝活性测定 | 第29-33页 |
| 2.4.7.1 动物实验 | 第29-30页 |
| 2.4.7.2 SOD 活性测定 | 第30-31页 |
| 2.4.7.3 CAT活性测定 | 第31-32页 |
| 2.4.7.4 LPO含量测定 | 第32页 |
| 2.4.7.5 MDA含量测定 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-48页 |
| 3.1 猴头菇EPS和IPS的纯化结果 | 第33-35页 |
| 3.1.1 EPS的DEAE-Cellulose纯化结果 | 第33-34页 |
| 3.1.2 IPS的DEAE-Cellulose纯化结果 | 第34-35页 |
| 3.2 猴头菇EPS和IPS气相色谱分析结果 | 第35-37页 |
| 3.2.1 气相色谱混合标样色谱图及分析 | 第35页 |
| 3.2.2 EPS气相色谱图及分析 | 第35-36页 |
| 3.2.3 IPS气相色谱图分析 | 第36-37页 |
| 3.3 猴头菇组分的红外光谱分析结果 | 第37-40页 |
| 3.3.1 EPS各组分的红外光谱分析 | 第37-38页 |
| 3.3.2 IPS各组分的红外光谱分析 | 第38-40页 |
| 3.4 猴头菇 EPS 和 IPS 的体外抗氧化活性 | 第40-42页 |
| 3.4.1 清除 DPPH | 第40-41页 |
| 3.4.2 还原力测定 | 第41页 |
| 3.4.3 清除羟基自由基 | 第41-42页 |
| 3.5 猴头菇 EPS 和 IPS 的保肝护肝作用 | 第42-48页 |
| 3.5.1 血清指标 | 第42-43页 |
| 3.5.2 EPS 和 IPS 对小鼠肝组织中 SOD 活性的影响 | 第43-44页 |
| 3.5.3 EPS 和 IPS 对小鼠肝组织中 CAT 活性的影响 | 第44-45页 |
| 3.5.4 EPS 和 IPS 对小鼠肝组织中 LPO 活性的影响 | 第45页 |
| 3.5.5 EPS 和 IPS 对小鼠肝组织中 MDA 活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.5.6 小鼠肝组织切片 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 4.1.猴头菇EPS和IPS的结构分析 | 第48页 |
| 4.2 体外抗氧化能力分析 | 第48-49页 |
| 4.3 保肝护肝能力分析 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 5.1.猴头菇EPS和IPS的结构 | 第50页 |
| 5.2 体外抗氧化能力 | 第50页 |
| 5.3 保肝护肝能力分析 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 攻读学位期间发表的论文及成果 | 第57页 |
