中文摘要 | 第5-9页 |
ABSTRACT | 第9-12页 |
中英文对照缩略词表 | 第16-19页 |
第一章 前言 | 第19-25页 |
第二章 文献综述 | 第25-41页 |
1 引言 | 第25页 |
2 抑制剂类药物 | 第25-32页 |
3 免疫治疗 | 第32-36页 |
4 其他 | 第36-37页 |
5 目前挑战与未来方向 | 第37-38页 |
6 结论 | 第38-41页 |
第三章 RDMSNS的制备、功能化及表征 | 第41-57页 |
3.1 材料与仪器 | 第41-42页 |
3.1.1 材料 | 第41页 |
3.1.2 仪器 | 第41-42页 |
3.2 实验方法 | 第42-46页 |
3.2.1 MSN-COON的合成 | 第42页 |
3.2.2 MSN-COON的一般性质 | 第42-43页 |
3.2.3 MSN-COOH的载药 | 第43页 |
3.2.4 RDMSNs的制备 | 第43-44页 |
3.2.5 CLSM观察RDMSNs | 第44页 |
3.2.6 RDMSNs的抗体连接率 | 第44-45页 |
3.2.7 DMSNs和RDMSNs的药物释放 | 第45页 |
3.2.8 不同MSN样品的氮气吸附脱附检测 | 第45-46页 |
3.2.9 统计学分析 | 第46页 |
3.3 结果 | 第46-53页 |
3.3.1 MSN-COOH的一般性质 | 第46-48页 |
3.3.2 DOX的荷载 | 第48-49页 |
3.3.3 RDMSNs的CLSM成像和抗体连接率 | 第49-51页 |
3.3.4 不同MSNs比表面积、孔容和孔径的测定 | 第51-52页 |
3.3.5 DOX的体外药物释放研究 | 第52-53页 |
3.4 讨论 | 第53-57页 |
第四章 RDMSNS的细胞靶向性评价及体外细胞毒性研究 | 第57-71页 |
4.1 材料与仪器 | 第57-59页 |
4.1.1 材料 | 第57-58页 |
4.1.2 仪器 | 第58-59页 |
4.1.3 细胞来源 | 第59页 |
4.2 实验方法 | 第59-63页 |
4.2.1 细胞培养 | 第59页 |
4.2.2 RDMSNs和DMSNs的细胞摄取 | 第59-60页 |
4.2.3 半数抑制浓度的测定 | 第60-61页 |
4.2.4 细胞毒性检测 | 第61页 |
4.2.5 CLSM观察凋亡细胞的形态 | 第61-62页 |
4.2.6 FCM分析细胞凋亡率 | 第62-63页 |
4.2.7 统计学分析 | 第63页 |
4.3 结果 | 第63-67页 |
4.3.1 DMSNs和RDMSNs纳米粒子的细胞摄取 | 第63-64页 |
4.3.2 DOX对Raji、Daudi和Jurkat细胞IC50的测定 | 第64-65页 |
4.3.3 不同MSNs的细胞毒性 | 第65-66页 |
4.3.4 不同MSNs诱导Raji细胞凋亡 | 第66-67页 |
4.4 讨论 | 第67-71页 |
第五章 RDMSNS对RAJI细胞淋巴瘤的治疗疗效及体内成像分析 | 第71-89页 |
5.1 材料和仪器 | 第72-74页 |
5.1.1 材料 | 第72-73页 |
5.1.2 仪器 | 第73-74页 |
5.1.3 细胞及实验动物 | 第74页 |
5.2 实验方法 | 第74-78页 |
5.2.1 RDMSNs的制备 | 第74页 |
5.2.2 裸鼠皮下Raji细胞淋巴瘤模型的建立 | 第74页 |
5.2.3 RDMSNs的抗肿瘤疗效及毒性评价 | 第74-75页 |
5.2.4 病理组织学检测 | 第75页 |
5.2.5 免疫组织化学分析 | 第75-76页 |
5.2.6 TUNEL染色分析 | 第76-77页 |
5.2.7 纳米探针粒子近红外活体成像 | 第77-78页 |
5.2.8 统计学分析 | 第78页 |
5.3 结果 | 第78-85页 |
5.3.1 裸鼠皮下移植瘤的建立 | 第78页 |
5.3.2 不同MSNs抗肿瘤疗效研究 | 第78-80页 |
5.3.3 病理组织学检测 | 第80页 |
5.3.4 免疫组织化学检测 | 第80-81页 |
5.3.5 TUNEL荧光染色检测 | 第81-82页 |
5.3.6 近红外成像及组织分布研究 | 第82-85页 |
5.4 讨论 | 第85-89页 |
第六章 总结与展望 | 第89-91页 |
6.1 结论 | 第89页 |
6.2 展望 | 第89-91页 |
参考文献 | 第91-109页 |
博士期间发表文章目录 | 第109-111页 |
个人简介 | 第111-113页 |
致谢 | 第113页 |