| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 前言 | 第9-20页 |
| 1.1 黄鳝的营养价值 | 第9页 |
| 1.2 黄鳝的药用价值 | 第9-10页 |
| 1.3 黄鳝的研究进展 | 第10页 |
| 1.4 肌细胞增强因子2基因家族(MEF2基因家族)研究进展 | 第10-18页 |
| 1.4.1 MADS-box转录因子家族 | 第10-11页 |
| 1.4.2 MEF2家族简介 | 第11页 |
| 1.4.3 MEF2的结构 | 第11-12页 |
| 1.4.4 MEF2在肌肉发育中的调控作用 | 第12-14页 |
| 1.4.5 MEF2因子在肌肉组织中的表达研究 | 第14页 |
| 1.4.6 MEF2因子的组织表达研究 | 第14-15页 |
| 1.4.7 MEF2A研究进展 | 第15-16页 |
| 1.4.8 MEF2B研究进展 | 第16页 |
| 1.4.9 MEF2C研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4.10 MEF2D研究进展 | 第17-18页 |
| 1.5 损伤试验建模 | 第18-19页 |
| 1.5.1 麻醉剂 | 第18页 |
| 1.5.2 损伤药剂 | 第18页 |
| 1.5.3 冰冻切片技术与SDH酶组化染色 | 第18-19页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 取样器材 | 第20页 |
| 2.1.3 实验取材 | 第20-21页 |
| 2.1.4 实验仪器与试剂 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-34页 |
| 2.2.1 总RNA提取 | 第23-24页 |
| 2.2.2 RNA检测 | 第24页 |
| 2.2.3 总RNADnase处理 | 第24页 |
| 2.2.4 感受态制备 | 第24-25页 |
| 2.2.5 cDNA第一链合成 | 第25-26页 |
| 2.2.6 引物设计 | 第26-27页 |
| 2.2.7 MEF2A,MEF2B,MEF2C和MEF2D编码区PCR扩增 | 第27-28页 |
| 2.2.8 PCR扩增片段的回收与纯化 | 第28页 |
| 2.2.9 MEF2基因ORF区产物的连接和转化 | 第28-29页 |
| 2.2.10 挑克隆(蓝白斑阳性克隆筛选)和测序 | 第29-30页 |
| 2.2.11 实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
| 2.2.12 数据处理 | 第31-32页 |
| 2.2.13 冰冻切片的制备SDH酶组化染色 | 第32页 |
| 2.2.14 冰冻切片制备 | 第32-33页 |
| 2.2.15 SDH酶组化染色流程 | 第33-34页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第34-64页 |
| 3.1 MEF2A、MEF2B、MEF2C和MEF2D克隆结果分析 | 第34-36页 |
| 3.1.1 肌肉总RNA的电泳结果 | 第34页 |
| 3.1.2 MEF2基因ORF区PCR克隆电泳结果 | 第34-36页 |
| 3.2 黄鳝MEF2基因序列分析 | 第36-40页 |
| 3.3 黄鳝MEF2基因家族氨基酸同源性比较与遗传距离分析 | 第40-52页 |
| 3.4 氨基酸序列比对和构建系统进化树 | 第52-54页 |
| 3.5 氨基酸含量比例 | 第54-59页 |
| 3.6 黄鳝MEF2基因家族的时空表达结果分析 | 第59页 |
| 3.7 黄鳝MEF2基因家族胚后不同发育阶段表达情况 | 第59-60页 |
| 3.8 黄鳝成鱼MEF2基因家族不同组织表达情况 | 第60-61页 |
| 3.9 损伤实验MEF2基因家族表达情况及SDH酶染色结果 | 第61-64页 |
| 第四章 讨论与分析 | 第64-67页 |
| 4.1 黄鳝MEF2基因家族基因结构讨论与分析 | 第64页 |
| 4.2 黄鳝MEF2基因家族骨骼肌不同发育阶段表达情况讨论与分析 | 第64-65页 |
| 4.3 黄鳝MEF2基因家族成鱼不同组织表达情况讨论与分析 | 第65-66页 |
| 4.4 黄鳝MEF2基因家族损伤试验中表达情况讨论与分析 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 作者简介 | 第75页 |
