| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 缩略词 | 第10-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-21页 |
| ·白血病干细胞靶向治疗的研究进展 | 第11-16页 |
| ·前言 | 第11-13页 |
| ·LSC 起源 | 第13页 |
| ·LSC 表型特征 | 第13页 |
| ·LSC 的分子机制 | 第13-14页 |
| ·靶向 LSC 的治疗 | 第14-16页 |
| ·针对腺病毒肿瘤特异性的改造策略 | 第16-17页 |
| ·腺病毒外壳蛋白修饰 | 第16-17页 |
| ·溶瘤腺病毒载体改造 | 第17页 |
| ·特异性启动子应用 | 第17页 |
| ·TRAIL 基因 | 第17-18页 |
| ·MnSOD 基因 | 第18页 |
| ·课题研究设计路线 | 第18页 |
| ·课题目的及意义 | 第18-19页 |
| ·新颖点 | 第19-20页 |
| ·课题基本实验方案 | 第20-21页 |
| 第二章 溶瘤腺病毒 Ad.-sCAR-IL-3TRAIL，Ad.-sCAR-IL-3-MnSOD 构建及鉴定 | 第21-33页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·质粒、病毒、菌株、细胞系 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22-23页 |
| ·设计引物与合成 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-31页 |
| ·重组质粒 pAd.hCMV–sCAR–IL–3–sp–E1A–△E1B–hCMV–TRAIL，pAd.hCMV–sCAR–IL–3 –sp–E1A–△E1B–hCMV–MnSOD的构建 | 第23-28页 |
| ·分子常用实验方法 | 第23-24页 |
| ·质粒 pAd.enAFP-E1A- △ E1B-hCMV-TRAIL ， pAd.enAFP-E1A- △ E1B- hCMV -MnSOD 的构建 | 第24-26页 |
| ·重组质粒 pAd.hCMV-sCAR-IL-3-sp-E1A-△E1B-hCMV-TRAIL，pAd.hCMV-sCAR-IL-3-sp-E1A-△E1B-hCMV-MnSOD 的构建 | 第26-28页 |
| ·目的病毒的包装、鉴定、大量扩增、纯化及滴度测定 | 第28-31页 |
| ·实验结果 | 第31-33页 |
| 第三章 携带 TRAIL/MnSOD 杀伤基因的溶瘤腺病毒对 LSCs 杀伤效果的体外研究 | 第33-44页 |
| ·实验用材料 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33页 |
| ·实验用细胞株 | 第33页 |
| ·病毒 Ad- sCAR-IL-3, Ad-sp 为本实验室所构建 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-35页 |
| ·MTT 法检测细胞增殖 | 第33-34页 |
| ·凋亡细胞染色实验：Hoechst 33342 染色 | 第34页 |
| ·AnnexinV/ PI 双染色法检测细胞凋亡 | 第34页 |
| ·统计学分析 | 第34-35页 |
| ·实验结果 | 第35-40页 |
| ·目的病毒显著抑制 KG-1，HL-60 增殖 | 第35-37页 |
| ·Rh-IL3-sRα对 Ad. -sCAR-IL-3 的抑制 | 第37页 |
| ·Ad. -sCAR-IL-3-TRAIL，Ad.-sCAR-IL-3-MnSOD 有效诱导 KG-1 细胞凋亡 | 第37-38页 |
| ·目的病毒诱导肿瘤细胞凋亡流式检测 | 第38-40页 |
| ·结论与讨论 | 第40-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 研究生其间研究成果 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
