| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第9-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-23页 |
| ·多靶向抗体类药物 | 第13页 |
| ·PD-L2 | 第13-19页 |
| ·PD-L2 的表达模式 | 第13-15页 |
| ·PD-L2 表达的调节 | 第15页 |
| ·PD-L2/ PD-1 的相互作用 | 第15-16页 |
| ·PD-L2 的生理功能 | 第16-17页 |
| ·PD-L2 与癌症 | 第17-19页 |
| ·VEGF | 第19-21页 |
| ·VEGF 在肿瘤血管发生与发展中的作用 | 第19-20页 |
| ·VEGF 受体 | 第20-21页 |
| ·Flt-1 和 KDR 与 VEGF 的相互作用 | 第21页 |
| ·VEGF 与 Flt-1 和 KDR 结合介导的生物效应 | 第21页 |
| ·本课题的设计思路和研究目的 | 第21-23页 |
| ·本课题的设计思路 | 第21-22页 |
| ·本课题的研究目的 | 第22-23页 |
| 第二章 携带融合基因 PD-L2-Flt1D2 -Fc 的腺病毒 Ad5-PFF 的构建 | 第23-45页 |
| ·前言 | 第23-24页 |
| ·实验器材 | 第24-28页 |
| ·主要实验材料 | 第24-25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·主要试剂 | 第25-26页 |
| ·主要试剂的配制方法 | 第26-27页 |
| ·所需引物 | 第27页 |
| ·基因片段 PD-L2-Flt1D2 的合成 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-37页 |
| ·载体 pDC659-PFF 的构建 | 第28-33页 |
| ·病毒重组、扩增和纯化 | 第33-37页 |
| ·实验结果 | 第37-43页 |
| ·载体 pDC659-PFF 的构建 | 第37-39页 |
| ·质粒 pDC659-PFF 的鉴定 | 第39-41页 |
| ·腺病毒 Ad5-PFF 的 PCR 鉴定 | 第41-43页 |
| ·讨论与小结 | 第43-45页 |
| 第三章 融合蛋白 PVP 的表达、纯化及初步功能研究 | 第45-61页 |
| ·前言 | 第45页 |
| ·实验器材 | 第45-48页 |
| ·主要实验材料 | 第45页 |
| ·主要实验仪器 | 第45-46页 |
| ·实验试剂 | 第46页 |
| ·主要试剂配置方法 | 第46-48页 |
| ·实验方法 | 第48-53页 |
| ·融合蛋白 PVP 的表达 | 第48-50页 |
| ·融合蛋白 PVP 的大量制备 | 第50页 |
| ·融合蛋白 PVP 的提取 | 第50-51页 |
| ·纯化后的融合蛋白 PVP 的浓度检测及初步功能研究 | 第51-53页 |
| ·结果 | 第53-60页 |
| ·重组 5 型腺病毒感染 293 细胞的预实验 | 第53页 |
| ·双抗体夹心 ELISA 实验 | 第53-54页 |
| ·Western Blotting 实验 | 第54-55页 |
| ·BCA 法测纯化后的融合蛋白量 | 第55页 |
| ·Octet Red 96 生物分子相互作用分析仪测定融合蛋白 PVP 的亲和力常数 | 第55-57页 |
| ·流式检测活化的 T 细胞与融合蛋白 PVP 的结合 | 第57-60页 |
| ·讨论与小结 | 第60-61页 |
| 第四章 结论 | 第61-62页 |
| ·结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
