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重组可溶性人TRAIL抑制肿瘤细胞增殖的研究

中文摘要第1-6页
英文摘要第6-14页
第一章 前言第14-44页
 一.TRAIL的研究进展第14-30页
  1.TRAIL及其受体的发现第15页
  2.TRAIL的分子结构第15-16页
  3.TRAIL的受体第16-19页
   3.1 TRAIL-R1第17-18页
   3.2 TRAIL-R2第18页
   3.3 TRAIL-R3第18-19页
   3.4 TRAIL-R4第19页
   3.5 OPG第19页
  4.TRAIL和受体之间的相互作用第19-20页
  5.TRAIL诱导凋亡的机制第20-22页
  6.机体对TRAIL和TRAILR的表达调控第22-23页
  7.与TRAIL凋亡有关的分子第23-24页
  8.TRAIL-DR激活的其他信号通路第24-25页
   8.1 NFκB信号通路第24页
   8.2 PI3激酶—AKt信号通路第24-25页
   8.3 JNK信号通路第25页
  9.TRAIL诱导细胞凋亡影响因素第25-26页
  10.TRAIL在肿瘤治疗中的应用第26-30页
   10.1 TRAIL在肿瘤治疗中的研究现状第27-28页
   10.2 增强癌细胞对TRAIL敏感性的策略第28-30页
    10.2.1 离子射线的作用第28页
    10.2.2 抗真菌药的作用第28页
    10.2.3 化疗药的作用第28-29页
    10.2.4 基因毒性药物的作用第29页
    10.2.5 细胞因子的作用第29页
    10.2.6 过氧化物酶增生物激活受体—γ的作用第29-30页
 二.大肠杆菌表达系统第30-36页
  1 表达宿主概述第30-31页
  2 表达载体pET系统概述第31-36页
   2.1 选择pET载体第31-34页
   2.2 表达菌株的选择第34-36页
 三.巴斯德毕赤酵母表达系统第36-44页
  1 巴斯德毕赤酵母的生物学第36-37页
  2 巴斯德毕赤酵母表达载体第37-39页
  3 巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的外部条件第39-44页
   3.1 外源基因特性第39页
   3.2 启动子的选择第39-40页
   3.3 mRNA的非翻译区(UTR)第40页
   3.4 起始密码子AUG的旁侧序列第40页
   3.5 表达框的染色体整合位点和方式第40页
   3.6 宿主菌的甲醇利用表型(Mut~+和Mut~s)第40-41页
   3.7 基因剂量第41-42页
   3.8 分泌信号第42页
   3.9 产物稳定性第42页
   3.10 翻译后修饰第42-43页
   3.11 发酵条件第43-44页
第二章 材料和方法第44-65页
 一.原核表达第44-59页
  2.1 材料第44-48页
   2.1.1 质粒和菌株第44页
   2.1.2 细菌和细胞培养所用溶液第44页
   2.1.3 提取总RNA所用的试剂与溶液第44-45页
   2.1.4 RT和PCR反应所用的试剂与溶液第45页
   2.1.5 PCR产物的回收,连接,鉴定所用的试剂与溶液第45页
   2.1.6 蛋白纯化,鉴定所用的试剂与溶液第45-47页
   2.1.7 Western-blot所用的试剂与溶液第47-48页
  2.2 方法第48-59页
   2.2.1 总RNA提取和第一链cDNA的合成第48页
   2.2.2 引物的合成和PCR反应第48-49页
   2.2.3 PCR产物回收与T载体法的连接和转化第49-53页
    2.2.3.1 PCR产物回收第49-50页
    2.2.3.2 T载体的连接第50-51页
    2.2.3.3 感受态细胞的制备第51页
    2.2.3.4 转化第51-52页
    2.2.3.5 碱裂解发提取质粒结果鉴定第52-53页
     2.2.3.5.1 收获第52页
     2.2.3.5.2 碱裂解法第52-53页
     2.2.3.5.3 酶切鉴定第53页
   2.2.4 重组子的筛选和鉴定第53页
    2.2.4.1 pET30a的酶切第53页
    2.2.4.2 重组子的构建和鉴定第53页
   2.2.5 重组蛋白的表达和纯化第53-56页
    2.2.5.1 重组蛋白的诱导表达第53-54页
    2.2.5.2 菌体的收获和破碎第54页
    2.2.5.3 蛋白的纯化第54页
    2.2.5.4 Western blotting第54-56页
   2.2.6 蛋白定量第56页
   2.2.7 细胞培养第56-57页
   2.2.8 MTT试验第57页
    2.2.8.1 实验原理第57页
    2.2.8.2 实验步骤第57页
   2.2.9 PI/Hoechest33258染色检测凋亡细胞第57-58页
    2.2.9.1 实验原理第57-58页
    2.2.9.2 实验步骤第58页
   2.2.10 计算机模拟第58-59页
 二.毕赤酵母表达第59-65页
  2.1 表达载体的构建第59页
   2.1.1 质粒和菌株第59页
   2.1.2 PCR引物第59页
   2.1.3 载体构建第59页
  2.2 酵母转化第59-61页
   2.2.1 溶液第59-60页
   2.2.2 方法第60-61页
  2.3 筛选第61-62页
   2.3.1 筛选多基因整合转化子第61页
   2.3.2 筛选Mut~+或Mut~s转化子第61-62页
  2.4 PCR鉴定整合第62-64页
   2.4.1 分离酵母DNA第62-63页
   2.4.2 PCR分析第63-64页
  2.5 诱导表达第64-65页
第三章 实验结果和讨论第65-78页
 3.1 原核表达第65-72页
  3.1.1 PCR第65-66页
  3.1.2 重组质粒的构建第66-67页
  3.1.3 重组蛋白的表达第67-69页
  3.1.4 重组蛋白的纯化第69页
  3.1.5 Western-blotting第69页
  3.1.6 重组TRAIL蛋白A,B可抑制肿瘤细胞增殖第69-70页
  3.1.7 蛋白B可抑制不同的肿瘤细胞增殖第70-71页
  3.1.8 计算机模拟第71-72页
 3.2 酵母表达第72-75页
  3.2.1 PCR第72-74页
  3.2.2 重组子的构建第74页
  3.2.3 酵母表达第74-75页
 3.3 讨论第75-78页
研究总结第78-79页
参考文献第79-88页
附录第88-89页
致谢第89页

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