| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 第一章 花生DNA提取、PCR反应条件优化及其栽培品种RAPD的分析 | 第14-34页 |
| 引言 | 第14-17页 |
| 1 材料与方法 | 第17-18页 |
| 1．1 花生DNA提取及其栽培品种RAPD的分析 | 第17-18页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第17页 |
| 1．1．2 DNA提取步骤 | 第17页 |
| 1．1．3 DNA检测和酶切 | 第17-18页 |
| 1．1．4 PCR反应 | 第18页 |
| 1．1．5 RAPD产物检测 | 第18页 |
| 1．1．6 数据处理和分析 | 第18页 |
| 2 结果与分析 | 第18-25页 |
| 2．1 花生DNA提取 | 第18-21页 |
| 2．2 花生RAPD反应条件优化结果 | 第21-23页 |
| 2．2．1 MgCl_2浓度的影响 | 第21页 |
| 2．2．2 BSA的加量的影响 | 第21页 |
| 2．2．3 引物浓度的影响 | 第21页 |
| 2．2．4 dNTPs浓度的影响 | 第21页 |
| 2．2．5 模板DNA加量的影响 | 第21页 |
| 2．2．6 Taq DNA聚合酶加量的影响 | 第21-23页 |
| 2．3 扩增结果与分析 | 第23-25页 |
| 2．3．1 花生栽培品种DNA随机扩增反应结果 | 第23-24页 |
| 2．3．2 花生栽培品种间遗传距离和聚类分析图 | 第24-25页 |
| 3 讨论 | 第25-29页 |
| 参考文献 | 第29-34页 |
| 第二章 长叶榧（Torreya jackii Chun）的RAPD分析 | 第34-59页 |
| 引言 | 第34-39页 |
| 1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 1．1 长叶榧DNA提取及RAPD的分析 | 第39-41页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第39-40页 |
| 1．1．2 DNA提取步骤 | 第40页 |
| 1．1．3 PCR反应 | 第40-41页 |
| 1．1．4 RAPD产物的检测 | 第41页 |
| 1．1．5 数据处理和分析 | 第41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-50页 |
| 2．1 长叶榧RAPD反应条件优化结果 | 第41-44页 |
| 2．1．1 MgCl_2浓度的影响 | 第41页 |
| 2．1．2 dNTPs浓度的影响 | 第41-42页 |
| 2．1．3 引物浓度的影响 | 第42页 |
| 2．1．4 模板DNA加量的影响 | 第42页 |
| 2．1．5 Taq DNA聚合酶加量的影响 | 第42-43页 |
| 2．1．6 引物筛选 | 第43-44页 |
| 2．2 长叶榧DNA随机扩增反应结果 | 第44-46页 |
| 2．3 遗传多样性指数分析 | 第46-48页 |
| 2．3．1 Nei基因多样度 | 第46-48页 |
| 2．3．2 Shannon信息指数 | 第48页 |
| 2．4 遗传距离、相似系数和聚类分析 | 第48-50页 |
| 2．5 遗传变异在居群内和居群间的分布 | 第50页 |
| 2．6 基因流畅分析 | 第50页 |
| 3 讨论 | 第50-54页 |
| 4 结论 | 第54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 第三章 应用RAPD技术对杉木地理种源遗传变异的分析 | 第59-71页 |
| 引言 | 第59页 |
| 1 材料与方法 | 第59-61页 |
| 1．1 试验材料 | 第59页 |
| 1．2 杉木DNA的提取 | 第59-60页 |
| 1．3 PCR反应 | 第60-61页 |
| 1．4 数据处理和分析 | 第61页 |
| 2 结果与分析 | 第61-66页 |
| 2．1 杉木地理种源DNA随机扩增反应结果 | 第63页 |
| 2．2 杉木地理种源间遗传距离和聚类分析图 | 第63-66页 |
| 3 讨论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 第四章 花生体细胞胚和丛生芽的诱导、再生及转化体系优化的初步研究 | 第71-97页 |
| 引言 | 第71-77页 |
| 1 材料与方法 | 第77-81页 |
| 1．1 花生体细胞胚和丛生芽的诱导及扩繁培养 | 第77-78页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第77页 |
| 1．1．2 培养基 | 第77-78页 |
| 1．1．3 培养方法 | 第78页 |
| 1．1．3．1 丛生芽的诱导与扩繁培养 | 第78页 |
| 1．1．3．2 体细胞胚的诱导与扩繁培养 | 第78页 |
| 1．2 花生再生和转化体系的初步研究 | 第78-81页 |
| 1．2．1 植物材料 | 第78页 |
| 1．2．2 农杆菌菌株及其所含质粒 | 第78页 |
| 1．2．3 饲喂细胞 | 第78页 |
| 1．2．4 培养基 | 第78-79页 |
| 1．2．5 组培方法 | 第79-80页 |
| 1．2．5．1 外植体准备 | 第79页 |
| 1．2．5．2 小叶长芽培养基及长愈伤组织培养基的筛选 | 第79页 |
| 1．2．5．2．1 小叶长芽点培养基筛选 | 第79页 |
| 1．2．5．2．2 小叶长愈伤组织培养基筛选 | 第79页 |
| 1．2．5．3 不同外植体的组培效果 | 第79页 |
| 1．2．5．4 卡那霉素筛选压的选择 | 第79-80页 |
| 1．2．6 农杆菌介导的遗传转化 | 第80-81页 |
| 1．2．6．1 农杆菌的准备 | 第80页 |
| 1．2．6．2 绘制农杆菌菌液生长曲线 | 第80页 |
| 1．2．6．3 转化 | 第80-81页 |
| 2 结果与分析 | 第81-89页 |
| 2．1 花生体细胞胚和丛生芽的诱导及扩繁培养结果与分析 | 第81-84页 |
| 2．1．1 丛生芽的诱导发生及其扩繁培养 | 第81-82页 |
| 2．1．1．1 不同培养基诱导丛生芽的差异 | 第81页 |
| 2．1．1．2 丛生芽的扩繁培养 | 第81-82页 |
| 2．1．2 体细胞胚的诱导及扩繁培养 | 第82-84页 |
| 2．1．2．1 体细胞胚的诱导 | 第82-83页 |
| 2．1．2．2 体细胞胚的扩繁培养 | 第83-84页 |
| 2．2 花生再生和转化体系优化的结果与讨论 | 第84-89页 |
| 2．2．1 小叶长芽培养基及长愈伤组织培养基的筛选结果 | 第84-86页 |
| 2．2．1．1 小叶长芽点培养基筛选结果 | 第84-86页 |
| 2．2．1．2 小叶长愈伤组织培养基筛选结果 | 第86页 |
| 2．2．2 不同外植体的组培效果 | 第86-87页 |
| 2．2．3 卡那霉素筛选压的选择结果 | 第87页 |
| 2．2．4 儿茶酚对农杆菌侵染力的影响 | 第87-88页 |
| 2．2．5 花生转基因卡那霉素抗性芽的获得 | 第88-89页 |
| 3 讨论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-97页 |
| 附表1 将石自然保护区长叶榧居群的Nei氏基因多样性指数和Shannon信息指数 | 第97页 |
| 附表2 许坊埂长叶榧居群的Nei氏基因多样性指数和Shannon信息指数 | 第97页 |
| 附表3 许坊水库长叶榧居群的Nei氏基因多样性指数和Shannon信息指数 | 第97页 |
| 附表4 长叶榧种群水平的Nei氏基因多样性指数和Shannon信息指数 | 第97页 |
