| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6页 |
| 缩略词索引 | 第10-13页 |
| 第一章 基于乳腺癌组织的蛋白质组学分析方法的应用与验证 | 第13-44页 |
| 1 引言 | 第13-28页 |
| 1.1 癌症 | 第13-14页 |
| 1.1.1 癌症的概述 | 第13页 |
| 1.1.2 癌症的发展及分期 | 第13-14页 |
| 1.2 乳腺癌 | 第14-17页 |
| 1.2.1 乳腺癌的全球数据 | 第14页 |
| 1.2.2 乳腺癌的分类 | 第14-17页 |
| 1.2.3 乳腺癌的转移 | 第17页 |
| 1.3 乳腺癌的诊断与治疗现状 | 第17-20页 |
| 1.3.1 乳腺癌的诊断方法 | 第17-19页 |
| 1.3.2 乳腺癌的治疗方案 | 第19-20页 |
| 1.4 蛋白质组学 | 第20-24页 |
| 1.4.1 蛋白质组学的概念 | 第20-21页 |
| 1.4.2 蛋白质组学的技术方法 | 第21-23页 |
| 1.4.3 应用于乳腺癌研究的蛋白质组学技术 | 第23-24页 |
| 1.5 蛋白质组学应用于乳腺癌研究的发现 | 第24-25页 |
| 1.6 实验构想与设计 | 第25-28页 |
| 2 实验材料与方法 | 第28-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.1.1 组织样本 | 第28页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第29-31页 |
| 2.1.4 溶液配制方法 | 第31页 |
| 2.1.5 蛋白质组学实验样本分组及iTRAQ标记信息 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-36页 |
| 2.2.1 蛋白样本制备 | 第31-32页 |
| 2.2.2 蛋白质定量方法 | 第32页 |
| 2.2.3 SDS-PAGE电泳、考马斯亮蓝染色及Western Blot | 第32-33页 |
| 2.2.4 冷冻切片及快速苏木精-伊红(HE)染色 | 第33页 |
| 2.2.5 FASP酶解 | 第33-34页 |
| 2.2.6 液质联用方法 | 第34-35页 |
| 2.2.7 数据库搜索 | 第35页 |
| 2.2.8 生物信息学分析 | 第35页 |
| 2.2.9 统计分析方法 | 第35-36页 |
| 3 实验结果 | 第36-42页 |
| 3.1 LC-MS/MS方法鉴定到的差异表达蛋白 | 第36页 |
| 3.2 蛋白质组学的KEGG功能注释 | 第36-39页 |
| 3.3 潜在关键因子ErbB2在乳腺癌组织中的表达情况 | 第39-40页 |
| 3.4 潜在关键因子ErbB2作为乳腺癌淋巴结转移标志物的评估 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 第二章 体外和体内研究LAPTM4B对乳腺癌进展的影响 | 第44-57页 |
| 1 引言 | 第44-46页 |
| 1.1 LAPTM4B | 第44页 |
| 1.2 实验构想与设计 | 第44-46页 |
| 2 实验材料与方法 | 第46-49页 |
| 2.1 细胞系和细胞培养 | 第46页 |
| 2.2 慢病毒介导的基因转染 | 第46页 |
| 2.3 蛋白质免疫印迹实验 | 第46页 |
| 2.4 细胞增殖测定 | 第46-47页 |
| 2.5 细胞周期分析 | 第47页 |
| 2.6 Transwell细胞侵袭分析 | 第47页 |
| 2.7 细胞粘附分析 | 第47页 |
| 2.8 体内肿瘤生长研究 | 第47页 |
| 2.9 统计分析方法 | 第47-49页 |
| 3 实验结果 | 第49-55页 |
| 3.1 LAPTM4B促进乳腺肿瘤细胞的增殖 | 第49页 |
| 3.2 LAPTM4B促进乳腺肿瘤细胞的侵袭和粘附 | 第49页 |
| 3.3 LAPTM4B促进乳腺肿瘤血管生成 | 第49-53页 |
| 3.4 LAPTM4B在裸鼠模型中促进乳腺肿瘤的生长 | 第53-55页 |
| 4 讨论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 附录Ⅰ 在校期间(待)发表的文章 | 第66页 |
