| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 1 前言 | 第13-14页 |
| 2 文献综述 | 第14-20页 |
| 2.1 骨骼肌纤维的分类 | 第14-15页 |
| 2.2 衰老对骨骼肌肌纤维的影响 | 第15页 |
| 2.3 运动对骨骼肌纤维类型的影响 | 第15-16页 |
| 2.4 调控骨骼肌纤维类型转化的信号通路 | 第16-20页 |
| 2.4.1 Ca~(2+)信号通路 | 第17页 |
| 2.4.2 AMPK信号通路 | 第17-18页 |
| 2.4.3 PGC-1α/PGC-1β途径 | 第18-19页 |
| 2.4.4 FoxO1途径 | 第19页 |
| 2.4.5 Myostatin途径 | 第19-20页 |
| 3 研究方法 | 第20-33页 |
| 3.1 主要实验仪器设备及耗材 | 第20-23页 |
| 3.1.1 主要仪器设备 | 第20-22页 |
| 3.1.2 主要试剂和耗材 | 第22-23页 |
| 3.2 实验动物的选择及实验分组、干预 | 第23页 |
| 3.3 取材与保存 | 第23-24页 |
| 3.4 琥珀酸脱氢酶活性测定 | 第24页 |
| 3.4.1 测试原理 | 第24页 |
| 3.4.2 操作步骤及计算 | 第24页 |
| 3.5 肌原纤维提取和MHC分析 | 第24-26页 |
| 3.5.1 肌原纤维蛋白提取及定量 | 第24-25页 |
| 3.5.2 MHC电泳 | 第25页 |
| 3.5.3 银染 | 第25-26页 |
| 3.5.4 拍照及分析 | 第26页 |
| 3.6 荧光定量PCR | 第26-30页 |
| 3.6.1 提取组织中的RNA | 第26-27页 |
| 3.6.2 RNA浓度及纯度测试 | 第27页 |
| 3.6.3 逆转录反应 | 第27页 |
| 3.6.4 扩增引物 | 第27页 |
| 3.6.5 荧光定量PCR | 第27-28页 |
| 3.6.6 PCR结果数据处理 | 第28-30页 |
| 3.7 WesternBlotting | 第30-33页 |
| 3.7.1 组织蛋白提取及定量蛋白质 | 第30-31页 |
| 3.7.2 WB上样样品准备 | 第31页 |
| 3.7.3 SDS-PAGE电泳 | 第31页 |
| 3.7.4 湿式电转膜 | 第31-32页 |
| 3.7.5 丽春红染色 | 第32页 |
| 3.7.6 免疫反应 | 第32-33页 |
| 3.7.7 拍照保存及计算 | 第33页 |
| 3.8 统计学处理 | 第33页 |
| 4 实验结果 | 第33-41页 |
| 4.1 大鼠一般情况 | 第33页 |
| 4.2 运动对大鼠SDH活性的影响 | 第33-34页 |
| 4.3 大鼠比目鱼肌和趾长伸肌MHC电泳结果 | 第34-36页 |
| 4.4 各组大鼠比目鱼肌和趾长伸肌PGC-ImRNA表达比较 | 第36-37页 |
| 4.5 各组大鼠比目鱼肌和趾长伸肌PGC-I蛋白表达比较 | 第37-41页 |
| 5 分析与讨论 | 第41-48页 |
| 5.1 衰老骨骼肌纤维类型的特点 | 第41-42页 |
| 5.2 耐力运动对青年和老年大鼠骨骼肌纤维类型的影响 | 第42-43页 |
| 5.3 耐力运动对青年和衰老大鼠不同类型骨骼肌PGC-1的影响 | 第43-48页 |
| 5.3.1 耐力运动对青年和老年大鼠不同类型骨骼肌PGC-1α的影响 | 第43-46页 |
| 5.3.2 PGC-1β在运动致骨骼肌纤维类型转化中的作用 | 第46-48页 |
| 6 结论与展望 | 第48-49页 |
| 7 致谢 | 第49-50页 |
| 8 参考文献 | 第50-59页 |
| 9 个人简历在读期间发表的学术论文和研究成果 | 第59页 |
