| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 缩写符号对照表 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 多氯联苯 | 第15-16页 |
| 1.2.1 多氯联苯的性质 | 第15-16页 |
| 1.2.2 多氯联苯与环境污染 | 第16页 |
| 1.2.3 多氯联苯的代谢 | 第16页 |
| 1.3 乳腺癌研究概况 | 第16-17页 |
| 1.4 肿瘤转移的过程 | 第17-18页 |
| 1.5 MMPs与肿瘤转移 | 第18-21页 |
| 1.5.1 MMPs研究概况 | 第18-20页 |
| 1.5.2 MMPs的调控 | 第20页 |
| 1.5.3 MMPs在乳腺癌发病中的地位 | 第20-21页 |
| 1.6 EMT与肿瘤转移 | 第21-22页 |
| 1.6.1 EMT研究概况 | 第21页 |
| 1.6.2 EMT的调控 | 第21-22页 |
| 1.6.3 Wnt/β-catenin信号通路 | 第22页 |
| 1.7 立体依据及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 PCB29-pQ对乳腺癌转移的影响 | 第23-37页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-25页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第24页 |
| 2.2.3 常用试剂制备方法 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第25页 |
| 2.3.2 3 D细胞的培养 | 第25页 |
| 2.3.3 细胞计数 | 第25-26页 |
| 2.3.4 细胞存活率实验 | 第26页 |
| 2.3.5 划痕实验 | 第26页 |
| 2.3.6 Transwell迁移实验 | 第26页 |
| 2.3.7 Transwell侵袭实验 | 第26页 |
| 2.3.8 动物模型的建立 | 第26-27页 |
| 2.3.9 组织病理学检查 | 第27页 |
| 2.3.10 统计分析 | 第27-28页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第28-37页 |
| 2.4.1 PCB29-pQ对乳腺癌MDA-MB-231和4T1细胞存活率的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.2 PCB29-pQ诱导MDA-MB-231细胞的迁移和侵袭 | 第29-30页 |
| 2.4.3 PCB29-pQ诱导4T1细胞的迁移和侵袭 | 第30页 |
| 2.4.4 PCBs及其代谢产物对乳腺癌细胞迁移的影响 | 第30-32页 |
| 2.4.5 PCB29-pQ暴露对乳腺癌细胞在裸鼠体内生长情况的影响 | 第32-34页 |
| 2.4.6 讨论 | 第34-37页 |
| 第三章 PCB29-pQ通过基质金属蛋白酶诱导乳腺癌细胞转移的机制探究 | 第37-55页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 实验材料 | 第37-40页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.3 常用试剂制备方法 | 第39-40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-44页 |
| 3.3.1 总蛋白的提取 | 第40页 |
| 3.3.2 细胞核/细胞质蛋白的提取 | 第40-41页 |
| 3.3.3 蛋白浓度定量 | 第41页 |
| 3.3.4 Westernblot实验 | 第41-42页 |
| 3.3.5 免疫荧光实验 | 第42页 |
| 3.3.6 明胶酶谱实验 | 第42页 |
| 3.3.7 EMSA实验 | 第42-43页 |
| 3.3.8 Transwell小室侵袭实验 | 第43页 |
| 3.3.9 免疫组化实验 | 第43-44页 |
| 3.3.10 统计分析 | 第44页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第44-55页 |
| 3.4.1 PCB29-pQ提高了乳腺癌细胞中MMP-2和MMP-9的表达与活性.. | 第44-45页 |
| 3.4.2 PCB29-pQ刺激MDA-MB-231细胞中NF-κB的表达 | 第45-47页 |
| 3.4.3 PCB29-pQ通过激活PI3K/AKT通路来诱导MMP-2和MMP-9的表达 | 第47页 |
| 3.4.4 PCB29-pQ通过激活ERK/p38来诱导MMP-2和MMP-9的表达 | 第47-49页 |
| 3.4.5 PCB29-pQ通过AKT/ERK/p38//NF-κB通路促进MDA-MB-231细胞的迁移 | 第49-51页 |
| 3.4.6 活性氧参与了PCB29-pQ对乳腺癌细胞迁移与侵袭的调控 | 第51页 |
| 3.4.7 讨论 | 第51-55页 |
| 第四章 PCB29-pQ通过Wnt/β-catenin信号通路介导细胞的上皮间充质转化 | 第55-63页 |
| 4.1 引言 | 第55页 |
| 4.2 实验材料 | 第55-56页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第55页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第55-56页 |
| 4.3 实验方法 | 第56页 |
| 4.3.1 总蛋白的提取 | 第56页 |
| 4.3.2 WesternBlot实验 | 第56页 |
| 4.3.3 免疫荧光实验 | 第56页 |
| 4.3.4 细胞核/细胞质蛋白的提取 | 第56页 |
| 4.3.5 流式细胞术 | 第56页 |
| 4.3.6 统计分析 | 第56页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第56-63页 |
| 4.4.1 PCB29-pQ诱导MDA-MB-231细胞发生EMT | 第57页 |
| 4.4.2 PCB29-pQ诱导MDA-MB-231细胞中的β-catenin入核 | 第57-58页 |
| 4.4.3 PCB29-pQ诱导MDA-MB-231细胞的EMT及迁移现象被XAV939阻断 | 第58页 |
| 4.4.4 PCB29-pQ提高了MDA-MB-231细胞中CD44+/CD24-的比例 | 第58-59页 |
| 4.4.5 讨论 | 第59-63页 |
| 全文总结 | 第63-65页 |
| 思考与展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 作者攻读硕士学位期间已发表科研成果 | 第77页 |
