| 摘要 | 第2-3页 |
| abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-9页 |
| 第一章 实验材料和试剂 | 第9-11页 |
| 1.1 临床样本、细胞株、病毒和实验动物 | 第9页 |
| 1.1.1 临床样本 | 第9页 |
| 1.1.2 细胞系 | 第9页 |
| 1.1.3 病毒 | 第9页 |
| 1.1.4 B-NSG重度免疫缺陷鼠 | 第9页 |
| 1.2 实验主要试剂与材料 | 第9-10页 |
| 1.3 主要实验仪器和设备 | 第10-11页 |
| 第二章 实验方法 | 第11-17页 |
| 2.1 Oncomine数据库分析TCGA数据库胶质瘤病人TOP2A的表达情况 | 第11页 |
| 2.2 PrognoScan数据库分析TOP2A的表达情况与胶质瘤的关系 | 第11页 |
| 2.3 免疫组化 | 第11-12页 |
| 2.4 人胶质瘤U87细胞及人胚肺成纤维细胞HELF培养 | 第12-13页 |
| 2.4.1 细胞复苏 | 第12页 |
| 2.4.2 细胞传代 | 第12-13页 |
| 2.5 HCMV病毒增殖与滴度测定 | 第13-14页 |
| 2.5.1 HCMVAD169病毒株扩增 | 第13页 |
| 2.5.2 TCID50法检测所制备HCMV病毒滴度 | 第13-14页 |
| 2.6 HCMV感染U87 | 第14页 |
| 2.6.1 HCMV感染胶质瘤U87细胞步骤 | 第14页 |
| 2.7 U87细胞总蛋白的提取 | 第14页 |
| 2.7.1 提取总蛋白 | 第14页 |
| 2.7.2 BCA法测蛋白浓度 | 第14页 |
| 2.8 Westernblot检测目的蛋白 | 第14-15页 |
| 2.8.1 SDS-PAGE电泳 | 第14-15页 |
| 2.8.2 电转移 | 第15页 |
| 2.8.3 免疫反应检测蛋白表达 | 第15页 |
| 2.9 肿瘤异种移植 | 第15-16页 |
| 2.9.1 培养U87细胞 | 第15页 |
| 2.9.2 HCMVAD169感染 | 第15-16页 |
| 2.9.3 建立HCMV感染胶质瘤重度免疫缺陷鼠模型 | 第16页 |
| 2.9.4 异种移植肿瘤样本免疫组织化学 | 第16页 |
| 2.10 统计学分析 | 第16-17页 |
| 第三章 结果 | 第17-32页 |
| 3.1 Oncomine数据库分析胶质瘤样本与正常脑组织TOP2A基因的表达情况 | 第17-18页 |
| 3.2 在PrognoScan数据库中分析胶质瘤病人TOP2A基因高表达与患者生存预后的关系 | 第18-19页 |
| 3.3 免疫组织化学技术检测胶质瘤临床样本IE1及TOP2A的表达 | 第19-24页 |
| 3.4 HCMV感染U87细胞促进TOP2A的表达 | 第24-26页 |
| 3.5 HCMV感染U87细胞能促进肿瘤异种移植的成瘤速度,并促进TOP2A高表达 | 第26-32页 |
| 第四章 讨论 | 第32-34页 |
| 第五章 结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 文献综述 | 第38-46页 |
| 胶质母细胞瘤 | 第38页 |
| 人巨细胞病毒 | 第38-39页 |
| 胶质瘤中存在着HCMV感染 | 第39页 |
| HCMV促进胶质瘤的增殖、细胞周期 | 第39页 |
| 抑制凋亡 | 第39-40页 |
| 影响细胞自噬 | 第40页 |
| 促进肿瘤血管生成 | 第40页 |
| 免疫逃避 | 第40-41页 |
| 促进胶质瘤干性 | 第41页 |
| 讨论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第46-47页 |
| 在学期间发表的论文 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
