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酶法转化制备L-瓜氨酸暨精氨酸脱亚氨基酶的性质研究

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-11页
符号说明及縮写词表第12-14页
第一章 文献综述第14-28页
    1.1 瓜氨酸研究进展第14-16页
        1.1.1 瓜氨酸代谢第14-16页
        1.1.2 瓜氨酸的生产方法第16页
    1.2 精氨酸脱亚氨基酶的研究进展第16-22页
        1.2.1 精氨酸脱亚氨基酶的药理作用第17-18页
        1.2.2 精氨酸脱亚氨基酶的研究进展第18-22页
    1.3 外源基因在大肠杆菌中的异源表达第22-25页
        1.3.1 密码子优化第23页
        1.3.2 培养条件优化第23页
        1.3.3 分子伴侣第23-24页
        1.3.4 细胞分泌表达第24-25页
        1.3.5 融合表达技术第25页
    1.4 本论文ADI来源菌株概况第25-26页
    1.5 本论文开展思路及研究内容第26-28页
第二章 三种ADI基因在大肠杆菌中异源表达第28-46页
    2.1 实验材料第28-33页
        2.1.1 本论文使用的实验菌株及质粒第28-29页
        2.1.2 本论文所使用的培养基第29-30页
        2.1.3 本论文中主要的工具酶、试剂与试剂盒第30页
        2.1.4 本论文中主要溶液的配制第30-32页
        2.1.5 本论文所使用的仪器设备第32-33页
    2.2 实验方法第33-41页
        2.2.1 ADI氨基酸序列的比较分析第33页
        2.2.2 密码子优化第33-34页
        2.2.3 表达载体的构建第34-39页
            2.2.3.1 目的片段的PCR扩增第34-35页
            2.2.3.2 PCR产物的切胶回收第35-36页
            2.2.3.3 连接pEASY-Blunt Simple Cloning Vector第36-37页
            2.2.3.4 PCR方法鉴定阳性重组子第37页
            2.2.3.5 质粒载体的酶切及连接第37-39页
            2.2.3.6 连接产物转化克隆宿主第39页
        2.2.4 目的蛋白的诱导培养第39-41页
        2.2.5 rADI活性检测第41页
    2.3 结果与讨论第41-45页
        2.3.1 三种ADI的氨基酸序列分析第41-43页
        2.3.2 密码子优化第43页
        2.3.3 表达载体的构建第43-44页
        2.3.4 rTADI、rPADI及rLADI的异源表达第44-45页
    2.4 本章小结第45-46页
第三章 促进精氨酸脱亚氨基酶高效水溶性表达的方法第46-56页
    3.1 实验菌株及质粒第46页
    3.2 实验方法第46-48页
        3.2.1 分子伴侣共表达第46-47页
        3.2.2 添加D-葡萄糖和L-精氨酸进行诱导表达第47页
        3.2.3 重组菌体总活力检测第47-48页
    3.3 结果与讨论第48-54页
        3.3.1 分子伴侣共表达第48-49页
        3.3.2 添加D-葡萄糖和L-精氨酸进行诱导表达第49-54页
    3.4 本章小结第54-56页
第四章 rTADI、rPADI与rLADI的纯化及酶学性质研究第56-76页
    4.1 实验菌株及质粒第56页
    4.2 实验方法第56-61页
        4.2.1 目的蛋白的诱导表达第56-57页
        4.2.2 水溶性蛋白的纯化第57页
        4.2.3 包涵体的体外复性第57页
        4.2.4 镍柱亲和层析纯化目的蛋白第57-58页
        4.2.5 蛋白浓度的测定第58页
        4.2.6 目的蛋白的透析第58-59页
            4.2.6.1 透析袋的预处理第58页
            4.2.6.2 透析第58-59页
        4.2.7 酶学性质研究第59-61页
            4.2.7.1 绘制L-瓜氨酸标准曲线第59页
            4.2.7.2 最适温度及热稳定性测定第59-60页
            4.2.7.3 最适pH及pH稳定性测定第60页
            4.2.7.4 金属离子及化学试剂对rADI活性的影响第60页
            4.2.7.5 动力学常数的测定第60-61页
            4.2.7.6 测定粗酶液的L-瓜氨酸转化率第61页
    4.3 结果与讨论第61-74页
        4.3.1 rPADI、rLADI蛋白的纯化第61-62页
        4.3.2 rTADI蛋白的纯化第62-65页
            4.3.2.1 rTADI的截短表达第62-64页
            4.3.2.2 rTADI的体外复性第64-65页
        4.3.3 重组酶的性质研究第65-74页
            4.3.3.1 L-瓜氨酸标准曲线第66页
            4.3.3.2 蛋白浓度标准曲线第66页
            4.3.3.3 温度对rPADI及rLADI活性的影响第66-68页
            4.3.3.4 pH对rPADI及rLADI活性的影响第68-70页
            4.3.3.5 金属离子及化学试剂对rPADI及rLADI活性的影响第70-72页
            4.3.3.6 动力学常数的测定第72-73页
            4.3.3.7 测定rPADI粗酶液的L-瓜氨酸转化率第73-74页
    4.4 本章小结第74-76页
总结与展望第76-78页
附录一序列信息第78-81页
    1 TADI基因的密码子优化序列第78-79页
    2 PADI基因的密码子优化序列第79-80页
    3 LADI基因的密码子优化序列第80-81页
附录二不同pH缓冲液的配制第81-82页
附录三表达载体图谱信息第82-88页
    1 表达载体pBAD/gⅢA载体图谱及特征第82-83页
    2 表达载体pET-30a(+)载体图谱及特征第83-84页
    3 表达载体pET-15b载体图谱及特征第84-85页
    4 表达载体pColdTF载体图谱及其特征第85-86页
    5 表达载体pGEX-6P-1载体图谱及特征第86-88页
参考文献第88-94页
致谢第94-96页
攻读学位期间发表的论文第96-97页
学位论文评闻及答辩情况表第97页

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