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DNA免疫制备抗牛IFN-γ单克隆抗体及其特性研究

摘要第6-7页
Abstract第7-8页
英文缩略词第14-15页
第一章 引言第15-21页
    1.1 结核病的概述第15-16页
        1.1.1 病原第15页
        1.1.2 结核病的流行病学第15-16页
        1.1.3 发病症状及病理特征第16页
    1.2 牛结核病的诊断方法第16-20页
        1.2.1 临床诊断第16-17页
        1.2.2 涂片镜检法第17页
        1.2.3 细菌分离培养法第17页
        1.2.4 分子生物学检测第17页
        1.2.5 结核菌素皮内变态反应试验第17页
        1.2.6 酶联免疫吸附试验第17页
        1.2.7 IFN-γ释放试验第17-20页
            1.2.7.1 IFN-γ研究综述第18页
            1.2.7.2 IFN-γ释放试验原理第18页
            1.2.7.3 IFN-γ释放试验检测检测牛结核特异性刺激原的选择第18-19页
            1.2.7.4 IFN-γ释放试验在诊断牛结核中的应用第19页
            1.2.7.5 IFN-γ释放试验的前景第19-20页
    1.3 研究的目的意义第20-21页
第二章 BovIFN-γ的克隆、表达与纯化和抗BovIFN-γ单克隆抗体的制备第21-39页
    2.1 材料及试剂第21-23页
        2.1.1 菌株、载体、细胞和实验动物第21页
        2.1.2 主要试剂及药品第21页
        2.1.3 主要仪器第21页
        2.1.4 细菌及细胞培养基的配制第21-22页
        2.1.5 抗生素及IPTG的配制第22页
        2.1.6 SDS-PAGE、Western-blot及ELISA缓冲液的配制第22-23页
    2.2 BovIFN-γ的克隆、表达与纯化第23-27页
        2.2.1 引物设计与合成第23页
        2.2.2 外周血单核细胞的分离培养、诱导及总RNA的提取第23页
        2.2.3 RT-PCR扩增cDNA第23页
        2.2.4 PCR扩增BovIFN第23页
        2.2.5 PCR产物及载体的酶切、胶回收和连接第23-24页
        2.2.6 大肠杆菌感受态细胞的制备第24-25页
        2.2.7 连接产物的转化第25页
        2.2.8 重组质粒p30b-BovIFN的酶切鉴定及测序第25-26页
        2.2.9 目的蛋白的诱导表达第26页
        2.2.10 目的蛋白的大量表达第26页
        2.2.11 目的蛋白的纯化第26-27页
        2.2.12 目的蛋白的Western-blot鉴定第27页
    2.3 抗BovIFN-γ,单克隆抗体的制备第27-32页
        2.3.1 制备单克隆抗体的技术路线第27-29页
        2.3.2 动物免疫第29页
            2.3.2.1 重组蛋白免疫程序第29页
            2.3.2.2 抗原最佳包被浓度和阴阳性血清最佳稀释度的确定第29页
        2.3.3 SP2/0骨髓瘤细胞的活化及制备第29页
        2.3.4 细胞融合第29-30页
        2.3.5 间接ELISA检测杂交瘤细胞上清中抗体效价第30-31页
        2.3.6 阳性杂交瘤细胞的克隆化第31页
        2.3.7 IFA检测单克隆杂交瘤细胞上清第31页
        2.3.8 阳性杂交瘤细胞的冻存第31-32页
        2.3.9 单克隆抗体腹水的生产第32页
        2.3.10 辛酸-硫酸铵法纯化单克隆抗体第32页
    2.4 结果及分析第32-38页
        2.4.1 BovIFN-γ的克隆、表达与纯化第32-35页
            2.4.1.1 目的片段BovIFN-γ基因扩增产物分析第32-33页
            2.4.1.2 重组质粒p30b-BovIFN的酶切鉴定及测序分析第33页
            2.4.1.3 用亲和层析法对目的蛋白进行纯化结果第33-34页
            2.4.1.4 目的蛋白的Western-blot分析第34-35页
        2.4.2 抗BovIFN-γ单克隆抗体的制备第35-38页
            2.4.2.1 抗原最佳包被浓度和阴阳性血清最佳稀释度的确定第35页
            2.4.2.2 免疫小鼠血清效价的检测第35-36页
            2.4.2.3 细胞融合后的观察第36页
            2.4.2.4 间接ELISA及IFA检测细胞株及阳性细胞株的建立第36-37页
            2.4.2.5 单克隆抗体的纯化第37-38页
    2.5 讨论第38-39页
第三章 pCA-Sr-IFN质粒的构建及抗BovIFN-γ单克隆抗体的制备第39-49页
    3.1 材料及试剂第39页
    3.2 pCA-Sr-IFN质粒的构建第39-41页
        3.2.1 引物设计与合成第39页
        3.2.2 RAW细胞基因组的提取第39页
        3.2.3 鼠源信号肽Sr的PCR扩增第39页
        3.2.4 重叠PCR扩增Sr-IFN基因片段与胶回收第39-40页
        3.2.5 Sr-IFN基因片段及pCAGGS载体的酶切、胶回收和连接第40页
        3.2.6 连接产物的转化第40页
        3.2.7 重组质粒的双酶切鉴定及测序第40-41页
        3.2.8 中提去内毒素pCA-Sr-IFN质粒第41页
    3.3 抗BovIFN-γ单克隆抗体的制备第41-42页
        3.3.1 质粒pCA-Sr-IFN免疫程序第41页
        3.3.2 细胞融合第41-42页
        3.3.3 IFA检测杂交瘤细胞上清第42页
        3.3.4 阳性杂交瘤细胞的克隆化、腹水的生产及单克隆抗体的常规验证第42页
    3.4 结果及分析第42-45页
        3.4.1 pCA-Sr-IFN质粒的构建第42-43页
            3.4.1.1 信号肽Sr基因扩增产物分析第42页
            3.4.1.2 Sr-IFN基因的扩增产物分析第42-43页
            3.4.1.3 重组质粒pCA-Sr-IFN的酶切鉴定及测序分析第43页
        3.4.2 抗BovIFN-γ单克隆抗体的制备第43-45页
            3.4.2.1 质粒免疫小鼠效价的检测第43-44页
            3.4.2.2 IFA检测杂交瘤细胞上清及阳性细胞株的建立第44-45页
            3.4.2.3 单克隆抗体的纯化第45页
    3.5 讨论第45-49页
        3.5.1 CHO细胞及信号肽的选择第45-46页
        3.5.2 小鼠免疫第46页
        3.5.3 细胞融合第46-47页
        3.5.4 筛选方法的建立第47页
        3.5.5 杂交瘤细胞的克隆化第47页
        3.5.6 操作过程中的污染和控制第47-49页
第四章 抗BovIFN-γ单克隆抗体的特性研究第49-56页
    4.1 材料及试剂第49页
    4.2 方法第49-51页
        4.2.1 单克隆抗体亚类的测定第49页
        4.2.2 Western-blot法检测单克隆抗体的反应特性第49-50页
        4.2.3 单克隆抗体相对亲和力的测定第50页
        4.2.4 单克隆抗体抗原表位分析第50页
        4.2.5 杂交瘤细胞染色体数的检测(秋水仙素裂解法)第50页
        4.2.6 酶标抗体的制备第50-51页
        4.2.7 抗体酶标效果的检测第51页
        4.2.8 初步夹心ELISA试验第51页
    4.3 结果及分析第51-55页
        4.3.1 单克隆抗体亚类的鉴定第51页
        4.3.2 Western-blot法检测单克隆抗体的反应特性第51-52页
        4.3.3 单克隆抗体相对亲和力的测定第52-53页
        4.3.4 单克隆抗体抗原表位分析第53页
        4.3.5 杂交瘤细胞稳定性和染色体数的检测第53页
        4.3.6 抗体酶标效果的检测第53-54页
        4.3.7 初步夹心ELISA试验第54-55页
    4.4 讨论第55-56页
第五章 全文结论第56-57页
参考文献第57-61页
致谢第61-62页
作者简历第62页

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