| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第16-46页 |
| 1 果胶类物质 | 第16-30页 |
| 1.1 果胶的组成和结构 | 第16-19页 |
| 1.1.1 光滑区(HG)结构 | 第17-18页 |
| 1.1.2 木糖区(XGA)结构 | 第18页 |
| 1.1.3 须状区(RG-Ⅰ)结构 | 第18-19页 |
| 1.1.4 须状区(RG-Ⅱ)结构 | 第19页 |
| 1.2 传统中药材来源的果胶结构及生物活性 | 第19-23页 |
| 1.2.1 柴胡果胶 | 第19-20页 |
| 1.2.2 当归果胶 | 第20-21页 |
| 1.2.3 人参果胶 | 第21-23页 |
| 1.2.4 甘草果胶 | 第23页 |
| 1.3 水生植物来源果胶的结构及生物活性 | 第23-26页 |
| 1.3.1 淡水植物浮萍多糖Lemnan | 第24页 |
| 1.3.2 海洋来源大叶藻胶Zosterin | 第24-26页 |
| 1.4 果胶的抗肿瘤活性 | 第26-29页 |
| 1.5 果胶的消化、吸收以及安全性评价 | 第29-30页 |
| 2 质谱法研究果胶类物质结构 | 第30-37页 |
| 2.1 质谱在糖结构解析中的应用 | 第30页 |
| 2.2 串联质谱鉴定糖苷键类型 | 第30-35页 |
| 2.2.1 1→2连接寡糖的串联质谱环内断裂规律 | 第31-32页 |
| 2.2.2 1→3连接寡糖的串联质谱环内断裂规律 | 第32-33页 |
| 2.2.3 1→4连接寡糖的串联质谱环内断裂规律 | 第33页 |
| 2.2.4 1→6连接寡糖的串联质谱环内断裂规律 | 第33-35页 |
| 2.2.5 呋喃型糖环的串联质谱环内断裂规律 | 第35页 |
| 2.3 质谱在果胶结构解析中的应用 | 第35-37页 |
| 2.3.1 HG区域的质谱序列分析 | 第35页 |
| 2.3.2 XG区域的质谱序列分析 | 第35-36页 |
| 2.3.3 RG-Ⅱ区域的质谱序列分析 | 第36页 |
| 2.3.4 RG-Ⅰ区域的质谱序列分析 | 第36-37页 |
| 3 课题研究意义及主要内容 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-46页 |
| 第二章 分步降解联合串联质谱解析果胶精细结构的方法学的建立 | 第46-79页 |
| 1 引言 | 第46页 |
| 2 材料与仪器 | 第46-47页 |
| 2.1 实验原料 | 第46页 |
| 2.2 主要实验试剂和材料 | 第46-47页 |
| 2.3 主要实验仪器 | 第47页 |
| 3 实验方法 | 第47-53页 |
| 3.1 柑橘果胶的纯化及理化性质研究 | 第47-51页 |
| 3.1.1 柑橘果胶的纯化 | 第47-48页 |
| 3.1.2 总糖含量的测定 | 第48页 |
| 3.1.3 蛋白含量测定 | 第48-49页 |
| 3.1.4 硫酸根含量测定 | 第49页 |
| 3.1.5 糖醛酸含量测定 | 第49-50页 |
| 3.1.6 分子量测定 | 第50页 |
| 3.1.7 单糖组成分析 | 第50-51页 |
| 3.1.8 傅里叶变换红外光谱(FTIR)分析 | 第51页 |
| 3.2 柑橘果胶寡糖的制备 | 第51-52页 |
| 3.2.1 正交试验确定酸降解条件 | 第51页 |
| 3.2.2 果胶酶降解条件摸索 | 第51-52页 |
| 3.2.3 柑橘果胶的分步降解 | 第52页 |
| 3.2.4 不同系列寡糖的分离纯化 | 第52页 |
| 3.3 寡糖的还原 | 第52页 |
| 3.4 寡糖的ESI-CID-MS~n分析 | 第52-53页 |
| 4 实验结果 | 第53-76页 |
| 4.1 柑橘果胶的纯化及理化性质研究 | 第53-56页 |
| 4.1.1 柑橘果胶的纯化 | 第53页 |
| 4.1.2 CP的分子量测定及纯度分析 | 第53-54页 |
| 4.1.3 CP的理化性质分析 | 第54-55页 |
| 4.1.4 CP的单糖组成分析 | 第55页 |
| 4.1.5 CP的红外光谱分析 | 第55-56页 |
| 4.2 寡糖的制备 | 第56-60页 |
| 4.2.1 寡糖的分步降解 | 第57-59页 |
| 4.2.2 寡糖的分离纯化 | 第59页 |
| 4.2.3 CP-S、CP-E的~1H-NMR分析 | 第59-60页 |
| 4.3 寡糖的ESI-CID-MS~n分析 | 第60-74页 |
| 4.3.1 RG-I区域主链结构的ESI-CID-MS~n分析 | 第64-68页 |
| 4.3.2 RG-I区域主链与侧链连接域的ESI-CID-MS~n分析 | 第68-70页 |
| 4.3.3 RG-I区域半乳糖侧链的ESI-CID-MS~n分析 | 第70-72页 |
| 4.3.4 HG区域寡糖的ESI-CID-MS~n分析 | 第72-74页 |
| 4.4 呋喃型阿拉伯寡糖的降解 | 第74-76页 |
| 5 本章小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 第三章 三种大叶藻来源果胶的提取分离纯化、结构解析 | 第79-132页 |
| 1 引言 | 第79-80页 |
| 2 材料与仪器 | 第80-81页 |
| 2.1 实验原料 | 第80页 |
| 2.2 主要实验试剂和材料 | 第80页 |
| 2.3 主要实验仪器 | 第80-81页 |
| 3 实验方法 | 第81-87页 |
| 3.1 多糖提取 | 第81页 |
| 3.2 粗多糖的单糖组成测定 | 第81-82页 |
| 3.3 多糖的分离纯化及纯度鉴定 | 第82-83页 |
| 3.3.1 多糖的Q-Sepharose Fast Flow离子交换色谱纯化 | 第82-83页 |
| 3.3.2 醋酸纤维素薄膜电泳 | 第83页 |
| 3.4 纯化后多糖的理化性质研究 | 第83页 |
| 3.5 ZCAP的结构解析 | 第83-87页 |
| 3.5.1 ZCAP的寡糖制备 | 第83-85页 |
| 3.5.2 不同系列寡糖的分离纯化 | 第85页 |
| 3.5.3 寡糖的还原 | 第85页 |
| 3.5.4 寡糖的ESI-CID-MS~n分析 | 第85页 |
| 3.5.5 羧基还原、甲基化反应及GC/MS分析 | 第85-87页 |
| 3.5.6 寡糖混合物的NMR分析 | 第87页 |
| 3.6 ZMAP的甲基化分析 | 第87页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第87-129页 |
| 4.1 粗多糖的提取 | 第87-88页 |
| 4.2 六种大叶藻粗多糖的单糖组成分析 | 第88-89页 |
| 4.3 三种草酸铵提取粗多糖的分离纯化 | 第89-91页 |
| 4.4 三种大叶藻果胶的理化性质、分子量、单糖组成及红外光谱分析 | 第91-97页 |
| 4.4.1 三种大叶藻果胶的理化性质分析 | 第91-93页 |
| 4.4.2 ZAAP、ZCAP和ZMAP的分子量分析 | 第93-95页 |
| 4.4.3 三种大叶藻果胶的单糖组成分析 | 第95-96页 |
| 4.4.4 三种大叶藻果胶的红外光谱分析 | 第96-97页 |
| 4.5 ZCAP的结构解析 | 第97-120页 |
| 4.5.1 ZCAP寡糖的制备 | 第97-102页 |
| 4.5.2 ZCMP寡糖的ESI-MS分析 | 第102页 |
| 4.5.3 ZCMP寡糖的ESI-CID-MS~2分析 | 第102-109页 |
| 4.5.3.3 AGA区域主链寡糖的ESI-CID-MS~2分析 | 第109-112页 |
| 4.5.4 ZCAP的甲基化分析 | 第112-117页 |
| 4.5.5 ZCAP-SS的核磁共振波谱(NMR)分析 | 第117-120页 |
| 4.6 ZMAP的甲基化分析 | 第120-129页 |
| 5 本章小结 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-132页 |
| 第四章 五种中药材来源果胶的提取分离纯化及结构解析 | 第132-169页 |
| 1 引言 | 第132页 |
| 2 材料与仪器 | 第132-133页 |
| 2.1 实验原料 | 第132页 |
| 2.2 主要实验试剂和材料 | 第132-133页 |
| 2.3 主要实验仪器 | 第133页 |
| 3 实验方法 | 第133-136页 |
| 3.1 多糖粗品的提取 | 第133-134页 |
| 3.2 理化性质分析 | 第134页 |
| 2.3 粗多糖的分离纯化 | 第134-135页 |
| 3.4 纯度分析-醋酸纤维素薄膜电泳法 | 第135页 |
| 3.5 当归草酸铵提取多糖DGP的结构解析 | 第135-136页 |
| 3.5.1 当归草酸铵提取多糖DGP的寡糖制备 | 第135-136页 |
| 3.5.2 当归草酸铵提取多糖DGP的羧记还原及甲基化分析 | 第136页 |
| 3.6 人参草酸铵提取多糖RSP的羧基还原及甲基化分析 | 第136页 |
| 4 实验结果-与讨论 | 第136-166页 |
| 4.1 粗多糖的提取 | 第136-137页 |
| 4.2 粗多糖的单糖组成分析 | 第137-139页 |
| 4.3 草酸铵提取粗多糖的分离纯化及纯度鉴定 | 第139-142页 |
| 4.3.1 粗多糖的Q Sepharose Fast Flow强效阴离子色谱纯化 | 第139-141页 |
| 4.3.2 纯度鉴定-醋酸纤维素薄膜电泳 | 第141-142页 |
| 4.4 纯化多糖的理化性质、红外光谱及单糖组成分析 | 第142-145页 |
| 4.5 当归草酸铵提取多糖DGP的结构解析 | 第145-161页 |
| 4.5.1 DGP寡糖的制备 | 第145-147页 |
| 4.5.2 DGP寡糖组分的ESI-MS分析 | 第147-152页 |
| 4.5.3 DGP寡糖的ESI-CID-MS~2分析 | 第152-155页 |
| 4.5.4 DGP的甲基化分析 | 第155-161页 |
| 4.6 人参草酸铵提取多糖RSP的甲基化分析 | 第161-166页 |
| 5 本章小结 | 第166-168页 |
| 参考文献 | 第168-169页 |
| 第五章 不同来源果胶多糖的抗肿瘤活性筛选及初步构效关系研究 | 第169-181页 |
| 1 引言 | 第169-170页 |
| 2 实验材料 | 第170页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第170页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第170页 |
| 3 实验方法 | 第170-172页 |
| 3.1 ZMAP寡糖片段制备 | 第170-171页 |
| 3.2 ZMAP寡糖的单糖组成测定 | 第171页 |
| 3.3 HUVEC细胞增殖抑制实验 | 第171页 |
| 3.4 HUVEC细胞迁移抑制实验 | 第171页 |
| 3.5 Raw264.7细胞吞噬中性红实验 | 第171-172页 |
| 4 实验结果 | 第172-177页 |
| 4.1 HUVEC细胞增殖抑制实验 | 第172-173页 |
| 4.2 HUVEC细胞迁移抑制实验 | 第173-175页 |
| 4.3 Raw264.7细胞吞噬中性红实验 | 第175-177页 |
| 5 讨论及本章小结 | 第177-179页 |
| 参考文献 | 第179-181页 |
| 结论 | 第181-183页 |
| 创新点 | 第183-184页 |
| 今后工作展望 | 第184-185页 |
| 个人简历 | 第185页 |
| 学术成果 | 第185-189页 |
| 致谢 | 第189页 |
