| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 第一章 斑点叉尾鮰养殖与病害 | 第14-24页 |
| 1. 斑点叉尾鮰生物学 | 第14-15页 |
| 2. 斑点叉尾鮰全球养殖情况 | 第15-17页 |
| 3. 病害对斑点叉尾鮰的危害情况 | 第17-23页 |
| 4. 小结 | 第23-24页 |
| 第二章 海豚链球菌研究进展 | 第24-36页 |
| 1. 海豚链球菌的分类及生物学特性 | 第24页 |
| 2. 海豚链球菌的感染与病变症状 | 第24-26页 |
| 3. 海豚链球菌致病机理以及毒力因子 | 第26-31页 |
| 4. 海豚链球菌的实验室检测方法 | 第31-34页 |
| 5. 防治方法 | 第34-36页 |
| 第三章 斑点叉尾鮰源海豚链球菌分离鉴定 | 第36-50页 |
| 1. 材料 | 第36-37页 |
| 2. 方法 | 第37-41页 |
| ·病原菌的分离纯化及保种 | 第37-38页 |
| ·人工感染试验 | 第38-39页 |
| ·病原菌表型特征 | 第39-40页 |
| ·16S rDNA序列扩增与系统发育树构建 | 第40页 |
| ·药敏性检测 | 第40-41页 |
| 3. 结果 | 第41-46页 |
| ·自然感染病料检测和菌株分离 | 第41页 |
| ·人工感染试验 | 第41-43页 |
| ·病原菌表型特征 | 第43-45页 |
| ·16S rDNA扩增结果和发育树分析 | 第45-46页 |
| ·病原菌抗药特性 | 第46页 |
| 4. 分析与讨论 | 第46-49页 |
| ·斑点叉尾鮰链球菌病的危害 | 第46-48页 |
| ·海豚链球菌的鉴定 | 第48-49页 |
| 5. 小结 | 第49-50页 |
| 第四章 斑点叉尾鮰源海豚链球菌生物学特性研究 | 第50-66页 |
| 1. 材料 | 第50-51页 |
| 2. 方法 | 第51-56页 |
| ·菌株的复苏与准备 | 第51-52页 |
| ·菌株培养特性 | 第52页 |
| ·随机扩增多态性DNA标记(RAPD)分型 | 第52页 |
| ·菌株毒力主要基因克隆特性 | 第52-55页 |
| ·菌株致病性 | 第55-56页 |
| 3. 结果 | 第56-63页 |
| ·菌株培养特性 | 第56-57页 |
| ·病原菌RAPD分型结果 | 第57-58页 |
| ·葡萄糖磷酸变位酶基因(pgmA)克隆分析 | 第58-59页 |
| ·荚膜多糖基因(cps)克隆分析 | 第59-60页 |
| ·细胞溶素S基因(sag)克隆分析 | 第60-61页 |
| ·菌株致病性检测结果 | 第61-63页 |
| 4. 分析与讨论 | 第63-65页 |
| ·菌株生物学特性与疾病流行情况 | 第63页 |
| ·海豚链球菌血清分型 | 第63-64页 |
| ·菌株致病力与毒力基因分析 | 第64-65页 |
| 5. 小结 | 第65-66页 |
| 第五章 斑点叉尾鮰海豚链球菌感染的病理形态学研究 | 第66-96页 |
| 1. 材料 | 第66-68页 |
| 2. 方法 | 第68-70页 |
| ·饲养管理 | 第68页 |
| ·菌株培养 | 第68页 |
| ·自然感染组织采集 | 第68页 |
| ·人工感染 | 第68-69页 |
| ·病理学检查 | 第69页 |
| ·血液学分析 | 第69-70页 |
| ·数据分析 | 第70页 |
| 3. 结果 | 第70-74页 |
| ·大体病变观察 | 第70-71页 |
| ·组织病理学变化 | 第71-73页 |
| ·超微病理学变化 | 第73-74页 |
| ·血液学检查 | 第74页 |
| 4. 分析与讨论 | 第74-79页 |
| ·大体感染症状辨析 | 第74-76页 |
| ·组织器官损伤分析 | 第76-78页 |
| ·损伤机制探讨 | 第78-79页 |
| 5. 小结 | 第79-80页 |
| 图版Ⅰ | 第80-81页 |
| 图版Ⅱ | 第81-92页 |
| 图版Ⅲ | 第92-96页 |
| 第六章 斑点叉尾鮰海豚链球菌感染组织分布规律研究 | 第96-111页 |
| 1. 材料 | 第96-97页 |
| 2. 方法 | 第97-99页 |
| ·饲养管理 | 第97页 |
| ·菌株培养 | 第97页 |
| ·动物感染试验与采样 | 第97页 |
| ·定量接种法检测组织中细菌分布 | 第97-98页 |
| ·免疫组化法检测海豚链球菌组织分布 | 第98-99页 |
| 3. 结果 | 第99-102页 |
| ·不同时间海豚链球菌在感染斑点叉尾鮰组织中的分离 | 第99-100页 |
| ·海豚链球菌在感染斑点叉尾鮰组织体内的定位分布 | 第100-102页 |
| 4. 分析与讨论 | 第102-105页 |
| ·检测S.iniae-DGX07间接免疫组化方法要点 | 第102-103页 |
| ·S.iniae-DGX07在斑点叉尾鮰体内的分布研究 | 第103-104页 |
| ·S.iniae-DGX07对斑点叉尾鮰侵袭机制探讨 | 第104-105页 |
| 5. 小结 | 第105-106页 |
| 图版Ⅳ | 第106-111页 |
| 第七章 斑点叉尾鮰源海豚链球菌间接ELISA检测方法的建立 | 第111-127页 |
| 1. 材料 | 第111-113页 |
| 2. 方法 | 第113-117页 |
| ·抗原的制备 | 第113页 |
| ·免疫血清的制备 | 第113-114页 |
| ·间接ELISA方法 | 第114页 |
| ·技术参数的筛选 | 第114-115页 |
| ·敏感性试验 | 第115页 |
| ·特异性试验 | 第115-116页 |
| ·临界值的选择 | 第116页 |
| ·重复性试验 | 第116页 |
| ·人工感染样品的检测 | 第116-117页 |
| 3. 结果 | 第117-124页 |
| ·血清效价和浓度 | 第117页 |
| ·间接ELISA技术参数 | 第117-120页 |
| ·敏感性试验 | 第120页 |
| ·特异性试验 | 第120-121页 |
| ·检测临界值的确定 | 第121-122页 |
| ·重复性试验 | 第122页 |
| ·人工感染样品的检测 | 第122-124页 |
| 4. 分析与讨论 | 第124-126页 |
| 5. 小结 | 第126-127页 |
| 第八章 斑点叉尾鮰源海豚链球菌双重PCR检测方法的建立 | 第127-141页 |
| 1. 材料 | 第127-128页 |
| 2. 方法 | 第128-130页 |
| ·引物设计与合成 | 第128页 |
| ·细菌的培养和基因组DNA的提取 | 第128页 |
| ·反应体系、扩增条件及引物检测 | 第128-129页 |
| ·扩增条件的优化 | 第129页 |
| ·特异性试验 | 第129-130页 |
| ·敏感性试验 | 第130页 |
| ·扩增结果判定 | 第130页 |
| ·人工感染样品的检测 | 第130页 |
| 3. 结果 | 第130-136页 |
| ·单一基因扩增结果 | 第130-131页 |
| ·扩增序列分析 | 第131-132页 |
| ·扩增条件的优化 | 第132-134页 |
| ·特异性PCR反应 | 第134-135页 |
| ·敏感性PCR反应 | 第135页 |
| ·人工感染样品的检测 | 第135-136页 |
| 4. 分析与讨论 | 第136-140页 |
| ·双重PCR扩增目的基因的选择 | 第136-138页 |
| ·双重PCR检测条件的摸索 | 第138-139页 |
| ·双重PCR检测方法的应用 | 第139-140页 |
| 5. 小结 | 第140-141页 |
| 第九章 总结 | 第141-144页 |
| 参考文献 | 第144-154页 |
| 致谢 | 第154-155页 |
| 发表文章情况 | 第155页 |
