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一种选择性内酰胺酶的分离纯化及酶学性质的研究

学位论文数据集第3-4页
摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 文献综述第11-21页
    1.1 手性化合物与生物不对称合成第11-17页
        1.1.1 引言第11页
        1.1.2 生命中的手性化合物第11-13页
        1.1.3 手性药物及手性中间体的合成第13-15页
            1.1.3.1 化学拆分法第13页
            1.1.3.2 不对称合成第13页
            1.1.3.3 微生物或酶催化拆分第13-15页
        1.1.4 生物不对称合成与转化的应用与展望第15-17页
    1.2 γ-内酰胺的酶法拆分第17-18页
        1.2.1 γ-内酰胺简介第17-18页
        1.2.2 拆分γ-内酰胺的研究进展第18页
            1.2.2.1 色谱分离法第18页
            1.2.2.2 微生物酶法第18页
    1.3 酰胺酶及(-)γ-内酰胺酶的分离纯化第18-19页
    1.4 课题的目的和意义第19-21页
第二章 (-)γ-内酰胺酶的分离纯化第21-45页
    2.1 引言第21页
    2.2 材料与方法第21-33页
        2.2.1 主要试剂、药品和材料第21-22页
        2.2.2 主要仪器第22-23页
        2.2.3 实验方法第23-33页
            2.2.3.1 菌种培养第23页
            2.2.3.2 确定分光光度法测定酶的活力的条件第23-24页
            2.2.3.3 HPLC确定各个步骤酶活力和ee值第24-25页
            2.2.3.4 底物在不同pH下的自发水解作用第25页
            2.2.3.5 目的蛋白在细胞内的定位以及破碎条件的选择第25-26页
            2.2.3.6 硫酸铵沉淀条件的选择第26页
            2.2.3.7 透析第26-27页
            2.2.3.8 确定phenyl-sepharose的最佳分离条件第27-29页
            2.2.3.9 确定DEAE-sepharose的最佳分离条件第29页
            2.2.3.10 确定凝胶层析sephacryl S 200的分离条件第29-30页
            2.2.3.11 聚丙烯酰胺凝胶电泳第30-31页
            2.2.3.12 酶比活力和纯化倍数的确定第31-33页
    2.3 结果与讨论第33-45页
        2.3.1 酶活力和转化产物的光学纯度的测定方法第33-34页
        2.3.2 底物无自发水解作用第34-35页
        2.3.3 细胞破碎条件第35-36页
        2.3.4 硫酸铵沉淀条件第36-37页
        2.3.5 透析第37-39页
        2.3.6 phenyl-sepharose的最佳分离条件第39-40页
        2.3.7 DEAE-sepharose的最佳分离条件第40-41页
        2.3.8 分子筛sephacryl S 200的分离条件第41-42页
        2.3.9 SDS-PAGE第42页
        2.3.10 蛋白纯化结果第42-45页
第三章 蛋白测序和酶学性质的研究第45-57页
    3.1 引言第45页
    3.2 材料与方法第45-50页
        3.2.1 主要实验材料第45-46页
        3.2.2 主要仪器第46页
        3.2.3 实验方法第46-50页
            3.2.3.1 测定酶的最适pH第46页
            3.2.3.2 测定酶的最适温度和最耐温度第46页
            3.2.3.3 测定金属离子对酶活力和转化产物的光学纯度的影响第46-47页
            3.2.3.4 测定酶促反应的米氏常数Km第47页
            3.2.3.5 目的蛋白活性染色第47-49页
            3.2.3.6 胶内酶切及质谱测序第49页
            3.2.3.7 Western-blot及氨基酸N-端测序第49-50页
    3.3 结果与讨论第50-57页
        3.3.1 酶的最适pH第50-51页
        3.3.2 酶的最适温度和最耐温度第51-53页
        3.3.3 金属离子对酶活力和转化产物的光学纯度的影响第53-54页
        3.3.4 酶促反应的K第54页
        3.3.5 目的蛋白活性染色结果第54页
        3.3.6 质谱测序结果第54-55页
        3.3.7 氨基酸N-端测序结果第55-57页
第四章 结论第57-59页
参考文献第59-63页
附录1第63-67页
附录2第67-69页
致谢第69-71页
研究成果及发表的学术论文第71-73页
作者及导师简介第73-74页
附件第74-75页

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