| 中文摘要 | 第4-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第9-25页 |
| 1 MRNA的稳定性 | 第10-17页 |
| 1.1 影响MRNA稳定性的主要因素 | 第10-13页 |
| 1.2 HU家族蛋白及其生物学功能研究 | 第13-17页 |
| 1.2.1 HU蛋白家族及其生物学功能 | 第14-16页 |
| 1.2.2 HUB蛋白的结构及生物学功能 | 第16-17页 |
| 1.2.3 HU家族蛋白功能的调节机制 | 第17页 |
| 2 PARLATION及其生物学功能研究 | 第17-23页 |
| 2.1 PARP-1的结构以及活性 | 第19-20页 |
| 2.2 PARP-1的生物学功能 | 第20-23页 |
| 3 论文的研究目的和意义 | 第23-25页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第25-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 Balb/c鼠、细胞株RAW264.7 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂、抗体和酶 | 第25页 |
| 2.1.3 培养基和主要试液 | 第25-26页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-34页 |
| 2.2.1 巨噬细胞RAW264.7的培养 | 第26页 |
| 2.2.2 获取Balb/c鼠腹腔巨噬细胞 | 第26-27页 |
| 2.2.3 RNA提取(Trizol法提取) | 第27-28页 |
| 2.2.4 反式聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第28页 |
| 2.2.5 荧光定量PCR(Q-PCR) | 第28-29页 |
| 2.2.6 免疫荧光(IF) | 第29-30页 |
| 2.2.7 HuB干涉实验 | 第30页 |
| 2.2.8 脂质体转染实验 | 第30页 |
| 2.2.9 获取小鼠各个组织细胞的蛋白样 | 第30-31页 |
| 2.2.10 获取小鼠各个组织细胞的cDNA | 第31-32页 |
| 2.2.11 获取小鼠肺组织细胞的cDNA | 第32-33页 |
| 2.2.12 获取小鼠肺组织细胞的蛋白样 | 第33-34页 |
| 第三章 实验结果与分析讨论 | 第34-44页 |
| 3.1 LPS刺激能够引起HUB和HUC表达量的上调 | 第34-36页 |
| 3.2 HUB蛋白在小鼠各个组织中广谱表达 | 第36-38页 |
| 3.3 LPS引起的HUB表达量的上调在2H已达到高峰 | 第38-40页 |
| 3.4 HUB可以提高CXCL-2和TNF-A MRNA的表达 | 第40-44页 |
| 第四章 讨论 | 第44-46页 |
| 4.1 HUB的表达 | 第44页 |
| 4.2 HUB功能的研究 | 第44-45页 |
| 4.3 HUB的表达调控 | 第45-46页 |
| 第五章 结论和主要创新点 | 第46-47页 |
| 5.1 HUB的表达具有遍在性以及可诱导性 | 第46页 |
| 5.2 HUB蛋白参与基因转录后水平上的调控 | 第46页 |
| 5.3 PARP-1参与基因转录后水平上的调控 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 英文缩写词 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
