| 致谢 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第10-11页 |
| 第二章 文献综述 | 第11-20页 |
| 2.1 菊粉 | 第11-12页 |
| 2.1.1 菊粉的概述 | 第11页 |
| 2.1.2 菊粉的化学结构 | 第11页 |
| 2.1.3 菊粉的理化性质 | 第11-12页 |
| 2.1.4 菊粉的来源 | 第12页 |
| 2.2 菊粉酶的研究现状 | 第12-17页 |
| 2.2.1 菊粉酶的分类 | 第13页 |
| 2.2.2 菊粉酶的生产菌株和酶学性质 | 第13-15页 |
| 2.2.3 微生物发酵法生产菊粉酶 | 第15-17页 |
| 2.2.3.1 产菊粉酶菌株的筛选 | 第15页 |
| 2.2.3.2 发酵条件对微生物菌株产菊粉酶的影响 | 第15-17页 |
| 2.3 菊粉酶的应用 | 第17-18页 |
| 2.3.1 利用菊粉酶制备高果糖浆 | 第17页 |
| 2.3.2 利用菊粉酶制备酒精 | 第17-18页 |
| 2.3.3 利用菊粉酶制备低聚果糖 | 第18页 |
| 2.4 目前酶水解法制备低聚果糖存在的问题 | 第18-19页 |
| 2.5 本论文主要研究目的与内容 | 第19-20页 |
| 第三章 产菊粉酶微生物菌株的筛选与鉴定 | 第20-30页 |
| 3.1 引言 | 第20页 |
| 3.2 材料与方法 | 第20-25页 |
| 3.2.1 样品来源 | 第20页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 3.2.3 实验设备 | 第21页 |
| 3.2.4 培养基 | 第21-22页 |
| 3.2.4.1 初筛培养基 | 第21页 |
| 3.2.4.2 PDA分离纯化培养基 | 第21-22页 |
| 3.2.4.3 种子培养基 | 第22页 |
| 3.2.4.4 复筛培养基 | 第22页 |
| 3.2.4.5 斜面保藏培养基 | 第22页 |
| 3.2.5 筛选方法 | 第22页 |
| 3.2.5.1 初筛 | 第22页 |
| 3.2.5.2 复筛 | 第22页 |
| 3.2.6 菊粉酶活力的测定 | 第22-24页 |
| 3.2.6.1 DNS试剂（3,5-二硝基水杨酸试剂）的配制 | 第22-23页 |
| 3.2.6.2 乙酸-乙酸钠缓冲液的配制 | 第23页 |
| 3.2.6.3 果糖标准曲线的测定 | 第23页 |
| 3.2.6.4 内切菊粉酶活力的测定 | 第23页 |
| 3.2.6.5 外切菊粉酶活力的测定 | 第23-24页 |
| 3.2.7 菌种鉴定 | 第24-25页 |
| 3.2.7.1 点种观察 | 第24页 |
| 3.2.7.2 电镜扫描 | 第24页 |
| 3.2.7.3 分子生物学鉴定 | 第24-25页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第25-28页 |
| 3.3.1 产菊粉酶菌株的筛选 | 第25-26页 |
| 3.3.1.1 产菊粉酶菌株的初筛 | 第25页 |
| 3.3.1.2 产菊粉酶菌株的复筛 | 第25-26页 |
| 3.3.2 产菊粉酶菌株的鉴定 | 第26-28页 |
| 3.3.2.1 真菌Z421的形态特征 | 第26-27页 |
| 3.3.2.2 ITS-rDNA序列鉴定 | 第27-28页 |
| 3.4 本章小结 | 第28-29页 |
| 附录 1 | 第29-30页 |
| 第四章 黑曲霉Aspergillus niger Z421产菊粉酶发酵条件的优化 | 第30-40页 |
| 4.1 引言 | 第30页 |
| 4.2 材料与方法 | 第30-32页 |
| 4.2.1 菌株 | 第30页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第30页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第30页 |
| 4.2.4 培养基 | 第30-31页 |
| 4.2.4.1 种子培养基 | 第30页 |
| 4.2.4.2 发酵产酶培养基 | 第30页 |
| 4.2.4.3 斜面保藏培养基 | 第30-31页 |
| 4.2.5 单因素实验优化微生物产菊粉酶的条件 | 第31页 |
| 4.2.5.1 碳源种类对微生物产菊粉酶的影响 | 第31页 |
| 4.2.5.2 氮源种类对微生物产菊粉酶的影响 | 第31页 |
| 4.2.5.3 无机盐或金属离子对微生物产菊粉酶的影响 | 第31页 |
| 4.2.5.4 产酶时间对微生物产菊粉酶的影响 | 第31页 |
| 4.2.5.5 不同氮源浓度对微生物产菊粉酶的影响 | 第31页 |
| 4.2.6 菊粉酶活力的测定 | 第31-32页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第32-39页 |
| 4.3.1 碳源种类对微生物产菊粉酶的影响 | 第32-33页 |
| 4.3.2 氮源种类对微生物产菊粉酶的影响 | 第33-35页 |
| 4.3.3 无机盐或金属离子对微生物产菊粉酶的影响 | 第35-36页 |
| 4.3.4 不同氮源浓度对微生物产菊粉酶的影响 | 第36-38页 |
| 4.3.5 产酶时间对微生物产菊粉酶的影响 | 第38-39页 |
| 4.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第五章 天然菊粉酶的定向拆分及酶解制备低聚果糖 | 第40-54页 |
| 5.1 引言 | 第40页 |
| 5.2 材料与方法 | 第40-44页 |
| 5.2.1 菌株 | 第40页 |
| 5.2.2 原料 | 第40页 |
| 5.2.3 实验试剂 | 第40-42页 |
| 5.2.4 实验设备 | 第42页 |
| 5.2.5 培养基 | 第42页 |
| 5.2.5.1 种子培养基 | 第42页 |
| 5.2.5.2 发酵产酶培养基 | 第42页 |
| 5.2.6 培养方法 | 第42页 |
| 5.2.7 菊芋渣对菊粉酶的吸附实验 | 第42-43页 |
| 5.2.8 菊粉酶活力的测定 | 第43页 |
| 5.2.9 低聚果糖的酶法制备 | 第43页 |
| 5.2.10 单因素实验优化酶法制备低聚果糖的条件 | 第43-44页 |
| 5.2.10.1 温度对低聚果糖含量的影响 | 第43页 |
| 5.2.10.2 底物浓度对低聚果糖含量的影响 | 第43-44页 |
| 5.2.10.3 酶用量对低聚果糖含量的影响 | 第44页 |
| 5.2.10.4 酶解时间对低聚果糖含量的影响 | 第44页 |
| 5.2.11 低聚果糖、果糖、葡萄糖、蔗糖的定量检测 | 第44页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第44-52页 |
| 5.3.1 天然菊粉酶的定向拆分制备 | 第44-49页 |
| 5.3.1.1 吸附时间对菊粉酶组分定向拆分的影响 | 第45-46页 |
| 5.3.1.2 底物浓度对菊粉酶组分定向拆分的影响 | 第46页 |
| 5.3.1.3 pH值对菊粉酶组分定向拆分的影响 | 第46-47页 |
| 5.3.1.4 温度对菊粉酶组分定向拆分的影响 | 第47-48页 |
| 5.3.1.5 定向拆分前后菊粉酶组分的变化 | 第48-49页 |
| 5.3.2 酶法制备低聚果糖 | 第49-52页 |
| 5.3.2.1 温度对低聚果糖含量的影响 | 第49页 |
| 5.3.2.2 底物浓度对低聚果糖含量的影响 | 第49-50页 |
| 5.3.2.3 酶用量对低聚果糖含量的影响 | 第50-51页 |
| 5.3.2.4 酶解时间对低聚果糖含量的影响 | 第51-52页 |
| 5.3.2.5 定向拆分前后菊粉酶酶解制备低聚果糖的对比 | 第52页 |
| 5.4 本章小节 | 第52-54页 |
| 第六章 结论与展望 | 第54-55页 |
| 6.1 结论 | 第54页 |
| 6.2 创新与展望 | 第54-55页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
