| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩写符号对照表 | 第13-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-36页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 碳点的概述 | 第14-15页 |
| 1.3 碳点的制备方法 | 第15-22页 |
| 1.3.1 自上而下法 | 第15-18页 |
| 1.3.2 自下而上法 | 第18-22页 |
| 1.4 碳点的基本性质 | 第22-26页 |
| 1.4.1 碳点的光学性质 | 第22-25页 |
| 1.4.2 碳点的生物相容性 | 第25-26页 |
| 1.5 碳点的应用 | 第26-33页 |
| 1.5.1 生物成像 | 第26-28页 |
| 1.5.2 分析检测 | 第28-31页 |
| 1.5.3 载药与基因传递 | 第31-32页 |
| 1.5.4 光催化 | 第32-33页 |
| 1.6 存在的问题 | 第33页 |
| 1.7 研究出发点与研究目标 | 第33-34页 |
| 1.8 研究内容和技术路线 | 第34-36页 |
| 第2章 合成氮、硫掺杂的碳点用于盐酸四环素的检测 | 第36-52页 |
| 2.1 前言 | 第36-37页 |
| 2.2 实验部分 | 第37-39页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第37页 |
| 2.2.2 实验材料与试剂 | 第37-38页 |
| 2.2.3 实验内容 | 第38-39页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第39-51页 |
| 2.3.1 碳点合成条件的优化 | 第39-41页 |
| 2.3.2 碳点的表征 | 第41-43页 |
| 2.3.3 碳点的光学性质 | 第43-45页 |
| 2.3.4 四环素的检测及机理探讨 | 第45-49页 |
| 2.3.5 基于IFE的固相传感分析 | 第49-51页 |
| 2.4 小结 | 第51-52页 |
| 第3章 氮、磷掺杂的聚合物碳点用于亚硝酸根的检测与细胞成像的研究 | 第52-66页 |
| 3.1 前言 | 第52-53页 |
| 3.2 实验部分 | 第53-55页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第53页 |
| 3.2.2 实验试剂与材料 | 第53页 |
| 3.2.3 实验内容 | 第53-55页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第55-65页 |
| 3.3.1 聚合物点（PCDs）的形貌与结构表征 | 第55-57页 |
| 3.3.2 聚合物碳点的光学性质表征 | 第57-58页 |
| 3.3.3 PCDs对亚硝酸根的检测 | 第58-61页 |
| 3.3.4 PCDs的细胞毒性与成像 | 第61-64页 |
| 3.3.5 PCDs监测NO_2~-进入细胞 | 第64-65页 |
| 3.4 小结 | 第65-66页 |
| 第4章 黄色发射碳点的合成及其用于铜离子和谷胱甘肽的检测 | 第66-80页 |
| 4.1 前言 | 第66-67页 |
| 4.2 实验部分 | 第67-68页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第67页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第67页 |
| 4.2.3 碳点（OPD-CDs）的合成与纯化 | 第67-68页 |
| 4.2.4 铜离子（Cu~(2+)）的检测 | 第68页 |
| 4.2.5 谷胱甘肽的检测 | 第68页 |
| 4.2.6 选择性实验 | 第68页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第68-78页 |
| 4.3.1 碳量子点（OPD-CDs）的形貌表征 | 第68-69页 |
| 4.3.2 碳点(OPD-CDs)的结构表征 | 第69-70页 |
| 4.3.3 碳点(OPD-CDs)的光谱表征和稳定性考察 | 第70-71页 |
| 4.3.4 OPD-CDs检测Cu~(2+)的条件优化 | 第71-72页 |
| 4.3.5 检测Cu~(2+)的标准曲线的测定 | 第72页 |
| 4.3.6 检测Cu~(2+)的选择性 | 第72-73页 |
| 4.3.7 检测Cu~(2+)的机理 | 第73-76页 |
| 4.3.8 谷胱甘肽（GSH）猝灭OPD-CDs+Cu~(2+)聚集体荧光 | 第76页 |
| 4.3.9 谷胱甘肽（GSH）的检测灵敏度 | 第76-78页 |
| 4.4 结论 | 第78-80页 |
| 第5章 全文总结与展望 | 第80-82页 |
| 5.1 全文总结 | 第80-81页 |
| 5.2 前景展望 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-90页 |
| 硕士期间科研成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
