| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-42页 |
| 1.1 水凝胶及应用 | 第14-22页 |
| 1.1.1 水凝胶的定义及发展 | 第14-15页 |
| 1.1.2 水凝胶的分类 | 第15-16页 |
| 1.1.3 水凝胶的环境敏感性 | 第16-17页 |
| 1.1.4 水凝胶的制备方法 | 第17-22页 |
| 1.1.5 水凝胶的应用 | 第22页 |
| 1.2 生物高分子水凝胶 | 第22-29页 |
| 1.2.1 生物高分子 | 第22-24页 |
| 1.2.2 生物高分子水凝胶 | 第24-29页 |
| 1.3 本论文的研究意义和主要内容 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-42页 |
| 第二章 聚丙烯酰胺海藻酸钠水凝胶微囊的制备及表征 | 第42-73页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-49页 |
| 2.2.1 材料与仪器 | 第43-45页 |
| 2.2.2 CaCO_3微球的制备及表征 | 第45页 |
| 2.2.3 聚丙烯酰胺(PAAm)水凝胶微球的制备 | 第45-46页 |
| 2.2.4 聚丙烯酰胺-海藻酸钠微凝胶的制备 | 第46页 |
| 2.2.5 酸性条件下去核得到胀大的水凝胶微囊 | 第46页 |
| 2.2.6 EDTA去核的对照实验 | 第46-47页 |
| 2.2.7 模拟药物释放 | 第47页 |
| 2.2.8 傅里叶变换红外光谱(FTIR)测试 | 第47-48页 |
| 2.2.9 扫描电子显微镜(SEM)表征 | 第48页 |
| 2.2.10 光学显微镜表征 | 第48页 |
| 2.2.11 切片观察内部结构 | 第48-49页 |
| 2.2.12 紫外可见(UV-vis)吸收光谱 | 第49页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第49-65页 |
| 2.3.1 碳酸钙微球的制备 | 第49-50页 |
| 2.3.2 聚丙烯酰胺水凝胶微球的制备 | 第50-51页 |
| 2.3.3 超强超膨胀的聚丙烯酰胺海藻酸钠水凝胶微囊的制备 | 第51-60页 |
| 2.3.4 微水凝胶的模拟药物释放 | 第60-65页 |
| 2.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 第三章 壳聚糖海藻酸钠多孔水凝胶的制备及表征 | 第73-102页 |
| 3.1 引言 | 第73-76页 |
| 3.2 实验部分 | 第76-82页 |
| 3.2.1 实验材料和仪器 | 第76-77页 |
| 3.2.2 京尼平交联壳聚糖水凝胶的制备 | 第77页 |
| 3.2.3 海藻酸钠水凝胶的制备 | 第77-78页 |
| 3.2.4 壳聚糖海藻酸钠复合水凝胶(CA)的制备 | 第78页 |
| 3.2.5 壳聚糖海藻酸钠多孔水凝胶的制备 | 第78页 |
| 3.2.6 傅里叶变换红外光谱(FTIR)测试 | 第78-79页 |
| 3.2.7 扫描电子显微镜(SEM)表征 | 第79-80页 |
| 3.2.8 光学显微镜表征 | 第80页 |
| 3.2.9 机械性能测试 | 第80页 |
| 3.2.10 不同pH下的溶胀性能 | 第80-81页 |
| 3.2.11 降解测试 | 第81页 |
| 3.2.12 体外细胞毒性实验 | 第81-82页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第82-96页 |
| 3.3.1 京尼平交联壳聚糖水凝胶的表征 | 第82-83页 |
| 3.3.2 海藻酸钠水凝胶的表征 | 第83-84页 |
| 3.3.3 壳聚糖海藻酸钠复合水凝胶的制备 | 第84-87页 |
| 3.3.4 壳聚糖海藻酸钠多孔水凝胶的制备 | 第87-88页 |
| 3.3.5 机械性能测试 | 第88-93页 |
| 3.3.6 不同pH下的溶胀性能 | 第93-94页 |
| 3.3.7 降解测试 | 第94-96页 |
| 3.3.8 体外细胞毒性 | 第96页 |
| 3.4 本章小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-102页 |
| 第四章 DNA-聚N-异丙基丙烯酰胺水凝胶的制备与表征 | 第102-131页 |
| 4.1 引言 | 第102-103页 |
| 4.2 实验部分 | 第103-111页 |
| 4.2.1 材料与仪器 | 第103-105页 |
| 4.2.2 溶液的配制 | 第105-106页 |
| 4.2.3 对硝基苯基丙烯酸酯的合成 | 第106页 |
| 4.2.4 末端修饰双键DNA的合成 | 第106-108页 |
| 4.2.5 对修饰过双键的DNA的生物活性的检测 | 第108页 |
| 4.2.6 PNIPAAm-DNA水凝胶的制备 | 第108页 |
| 4.2.7 傅里叶变换红外光谱(FTIR)测试 | 第108-109页 |
| 4.2.8 核磁共振氢谱的测试(NMR-~1H) | 第109页 |
| 4.2.9 紫外可见(UV-vis)吸收光谱 | 第109页 |
| 4.2.10 琼脂糖凝胶电泳 | 第109-110页 |
| 4.2.11 基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱(MOLDI-TOF-MS) | 第110页 |
| 4.2.12 热分析(DSC) | 第110页 |
| 4.2.13 机械性能测试 | 第110-111页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第111-126页 |
| 4.3.1 对硝基苯基丙烯酸酯的合成 | 第111-114页 |
| 4.3.2 先接双键后配对的方法合成结构上带双键的DNA与NIPAAm共聚 | 第114-120页 |
| 4.3.3 DNA-PNIPAAm水凝胶的制备 | 第120-121页 |
| 4.3.4 DNA-PNIPAAm水凝胶的机械性能 | 第121-122页 |
| 4.3.5 DNA-PNIPAAm水凝胶的雾点的测定 | 第122-123页 |
| 4.3.6 DNA-PNIPAAm水凝胶的相转变温度的测试(DSC) | 第123-125页 |
| 4.3.7 DNA-PNIPAAm水凝胶制备时的DNA浓度 | 第125-126页 |
| 4.4 本章小结 | 第126页 |
| 参考文献 | 第126-131页 |
| 第五章 全文总结 | 第131-135页 |
| 5.1 全文总结 | 第131-133页 |
| 5.2 研究的创新点 | 第133页 |
| 5.3 展望 | 第133-135页 |
| 附录A 攻读博士学位期间所发表的学术成果目录 | 第135-137页 |
| 致谢 | 第137-138页 |
