| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-12页 |
| 第一章 植物中氮的同化和使用效率的研究进展 | 第12-26页 |
| ·氮使用效率概述 | 第12-13页 |
| ·氮从根围到种子的通路 | 第13-15页 |
| ·根能感应根围氮的存在形式和浓度变化 | 第13页 |
| ·氮的摄取 | 第13页 |
| ·氮的同化 | 第13-15页 |
| ·氮的转运和再活化 | 第15页 |
| ·根部氮流失 | 第15页 |
| ·植物地上部分不稳定的氮损失 | 第15页 |
| ·从遗传角度探讨氮使用效率不同的原因 | 第15-16页 |
| ·相同植物物种自然变异的不同基因型 | 第15-16页 |
| ·在有限和充分氮源条件下植物氮的使用效率不同 | 第16页 |
| ·农业科学中土壤氮和肥料氮的效率 | 第16-17页 |
| ·土壤和肥料氮的使用效率 | 第16页 |
| ·在集约农业中氮养分综合管理 | 第16-17页 |
| ·氮的摄取效率 | 第17-19页 |
| ·氮调节的根部系统 | 第17页 |
| ·硝酸盐转运蛋白的功能 | 第17-18页 |
| ·铵盐转运蛋白的功能 | 第18页 |
| ·尿素转运蛋白的功能 | 第18-19页 |
| ·植物激素的干扰 | 第19页 |
| ·氮生理利用效率 | 第19-21页 |
| ·氮的同化效率 | 第19-20页 |
| ·氮的转运和再活化效率 | 第20页 |
| ·CO_2浓度提高对氮使用效率的影响 | 第20-21页 |
| ·种子质量和储存蛋白 | 第21页 |
| ·提高氮使用效率的途径 | 第21-25页 |
| ·根构型和根系活性保持 | 第23页 |
| ·氮和铵转运蛋白的过表达 | 第23-24页 |
| ·控制氮和其它代谢平衡的关键基因 | 第24页 |
| ·细胞质中pH的平衡 | 第24-25页 |
| ·增加产量和氮收获指数提升氮的获取和利用 | 第25页 |
| ·育种中高氮使用效率的分子标记 | 第25页 |
| ·总结和展望 | 第25-26页 |
| 第二章 调节水稻铵吸收和代谢的基因筛选 | 第26-44页 |
| ·前言 | 第26-27页 |
| ·材料和方法 | 第27-33页 |
| ·植物材料 | 第27页 |
| ·植物愈伤组织培养和再分化所需的溶液配制 | 第27-29页 |
| ·水稻愈伤组织的培养和再分化 | 第29页 |
| ·水稻DNA的提取 | 第29-30页 |
| ·Ds水稻突变体的Southern blot检测 | 第30页 |
| ·反向PCR（Inverse PCR, IPCR） | 第30-31页 |
| ·铵相关突变体筛选 | 第31-32页 |
| ·根表型稳定性测试 | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-43页 |
| ·水稻愈伤组织培养 | 第33-34页 |
| ·Southern blot检测Ds在再分化植物中的分布情况 | 第34页 |
| ·铵相关突变体筛选 | 第34-36页 |
| ·各突变体在光和暗条件下对铵的反应 | 第36-38页 |
| ·根表型稳定性测试 | 第38页 |
| ·野生型和突变体中氮吸收和代谢重要基因表达量的考察 | 第38-40页 |
| ·野生型和突变体中GS/GOGAT活性的考察比较 | 第40-41页 |
| ·m1突变体中Ds的插入位点 | 第41-43页 |
| ·小结和讨论 | 第43-44页 |
| 第三章 拟南芥油菜素内脂（BR）信号对铵吸收的影响 | 第44-60页 |
| ·前言 | 第44-45页 |
| ·材料和方法 | 第45-48页 |
| ·植物培养 | 第45页 |
| ·RNA提取 | 第45-46页 |
| ·q RT-PCR（荧光定量PCR） | 第46-47页 |
| ·植物体内铵浓度测试 | 第47-48页 |
| ·谷氨酰胺合成酶（GS）活性检测 | 第48页 |
| ·拟南芥嫩枝叶绿素含量的测定 | 第48页 |
| ·结果与分析 | 第48-57页 |
| ·油菜素内脂（BR）抑制AMT1和GS/GOGAT基因的表达 | 第48-50页 |
| ·NH4+介导的GS/GOGAT基因表达在bes-1 D中被抑制 | 第50-53页 |
| ·BES1制止NH4+介导的AMT1抑制 | 第53-54页 |
| ·bes1-D突变体对NH4+和Gln均敏感 | 第54-57页 |
| ·小结和讨论 | 第57-60页 |
| 第四章 拟南芥中光受体和油菜素内酯信号传导之间的关系 | 第60-75页 |
| ·前言 | 第60-62页 |
| ·材料和方法 | 第62-65页 |
| ·植物材料 | 第62-64页 |
| ·RNA提取及q RT-PCR | 第64页 |
| ·引物设计 | 第64-65页 |
| ·结果与分析 | 第65-72页 |
| ·COP1突变体cop1-4 和HY5过表达突变体HY5 ox在BR处理后下胚轴的延伸情况不同 | 第65-67页 |
| ·光受体突变体在BR处理后下胚轴的伸长情况不同 | 第67-70页 |
| ·BR是phot1-2/cry1-2 突变体表型和基因调节所必需的 | 第70-71页 |
| ·BR信号负调控光受体 | 第71-72页 |
| ·小结和讨论 | 第72-75页 |
| ·光受体对AMT1表达的影响 | 第72-73页 |
| ·光受体和BR信号之间的关系 | 第73-75页 |
| 第五章 拟南芥At BS14b过表达对油菜素内酯信号的影响 | 第75-92页 |
| ·前言 | 第75-76页 |
| ·材料和方法 | 第76-78页 |
| ·植物材料 | 第76-77页 |
| ·引物信息 | 第77-78页 |
| ·烟草叶子中Split GFP分析 | 第78页 |
| ·RNA提取及q RT-PCR分析 | 第78页 |
| ·mb SUS酵母双杂分析 | 第78页 |
| ·结果与分析 | 第78-90页 |
| ·Qc-SNARE At BS14b定位于囊泡 | 第78-79页 |
| ·At BS14b过表达植物展现的是短叶柄和短下胚轴的表型 | 第79-83页 |
| ·At BS14b ox植株对BR不敏感 | 第83-87页 |
| ·BR介导的3种生物合成酶表达的抑制在At BS14b ox突变体中得到制止..765.3.5 At BS14b与MSBP1相互作用 | 第87-89页 |
| ·AtBS14b与MSBP1相互作用 | 第89-90页 |
| ·小结和讨论 | 第90-92页 |
| ·At BS14b（Qc-SNARE）涉及BR信号传导 | 第90-91页 |
| ·At BS14b与MSBP1的作用可能在调节BR信号通路中起重要的作用 | 第91-92页 |
| 结论 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-103页 |
| 附录 | 第103-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 作者简介 | 第117页 |
| 个人经历 | 第117页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第117页 |
