中国蜂胶中多酚类成分分析及抗氧化活性研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 1 绪论 | 第11-22页 |
| ·蜂胶简介 | 第11页 |
| ·蜂胶的主要成分 | 第11-13页 |
| ·蜂胶中的黄酮类 | 第12-13页 |
| ·蜂胶中的酚酸及其酯类 | 第13页 |
| ·蜂胶中其它类物质 | 第13页 |
| ·蜂胶的功能活性 | 第13-15页 |
| ·蜂胶的抗氧化作用 | 第13-15页 |
| ·蜂胶的其他功能 | 第15页 |
| ·自由基 | 第15-16页 |
| ·生物体内自由基的相互转化 | 第16页 |
| ·抗氧化测定方法 | 第16-20页 |
| ·ORAC法 | 第17页 |
| ·超氧阴离子清除能力 | 第17页 |
| ·细胞模型实验 | 第17-20页 |
| ·本论文的立题背景 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-22页 |
| 2 蜂胶活性成分的分离与鉴定 | 第22-39页 |
| ·引言 | 第22页 |
| ·实验材料与仪器设备 | 第22-24页 |
| ·材料与试剂 | 第22-23页 |
| ·仪器与设备 | 第23-24页 |
| ·实验方法与步骤 | 第24-25页 |
| ·蜂胶75%乙醇提取液制备 | 第24页 |
| ·混合标准品溶液配制 | 第24页 |
| ·HPLC色谱条件 | 第24页 |
| ·样品中各组分的定性 | 第24页 |
| ·HPLC-EIS-Q-TOF MS分析 | 第24页 |
| ·样品中各组分的定量 | 第24-25页 |
| ·数据处理 | 第25页 |
| ·结果与分析 | 第25-37页 |
| ·液相色谱条件的确定 | 第25页 |
| ·混合标准品HPLC色谱图 | 第25-26页 |
| ·蜂胶提取物的HPLC-ESI-Q-TOF MS | 第26-30页 |
| ·各产地蜂胶的分类 | 第30-33页 |
| ·不同产地的蜂胶中各组分含量 | 第33-37页 |
| ·本章小结 | 第37-39页 |
| 3 ORAC法测定蜂胶的抗氧化能力 | 第39-56页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·实验材料和仪器设备 | 第39-40页 |
| ·材料和试剂 | 第39-40页 |
| ·仪器和设备 | 第40页 |
| ·实验方法和步骤 | 第40-42页 |
| ·试剂准备 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-42页 |
| ·结果与讨论 | 第42-53页 |
| ·ORAC标准曲线的绘制 | 第42-44页 |
| ·85种蜂胶样品的ORAC值 | 第44-47页 |
| ·五类蜂胶不同提取物的ORAC值 | 第47-49页 |
| ·不同产地蜂胶的ORAC值 | 第49页 |
| ·蜂胶75%乙醇提取物清除超氧阴离子自由基能力 | 第49-53页 |
| ·蜂胶的抗氧化能力与各组分的相关性 | 第53-54页 |
| ·本章小结 | 第54-56页 |
| 4 细胞模型研究蜂胶的抗氧化能力 | 第56-69页 |
| ·引言 | 第56-57页 |
| ·实验材料与仪器设备 | 第57页 |
| ·材料与试剂 | 第57页 |
| ·仪器与设备 | 第57页 |
| ·实验方法与步骤 | 第57-60页 |
| ·细胞培养 | 第57-58页 |
| ·MTT法检测蜂胶对HepG2细胞的毒性 | 第58页 |
| ·酶标仪测定细胞内的荧光强度 | 第58-59页 |
| ·细胞模型的建立 | 第59页 |
| ·通过细胞模型测定蜂胶的抗氧化活性 | 第59-60页 |
| ·结果与讨论 | 第60-68页 |
| ·MTT实验 | 第60-61页 |
| ·不同浓度蜂胶的细胞内抗氧化(CAA)能力 | 第61页 |
| ·细胞模型的建立 | 第61-66页 |
| ·细胞模型研究不同蜂胶样品的抗氧化能力 | 第66-68页 |
| ·本章小结 | 第68-69页 |
| 结论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-78页 |
| 附录 | 第78-79页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
