| 中文摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-27页 |
| ·引言 | 第10-11页 |
| ·免疫隔离技术的原理与人工细胞 | 第11-12页 |
| ·人工细胞材料及制备方法 | 第12-15页 |
| ·国内外人工细胞的研究概况 | 第15-17页 |
| ·多孔材料的制备方法 | 第17-21页 |
| ·膜分离技术在国内外的发展状况 | 第21-23页 |
| ·本论文的主要工作及背景 | 第23-27页 |
| ·研究背景及目的 | 第23-25页 |
| ·本论文的主要研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 纳米级多孔钛的制备及影响因素 | 第27-48页 |
| ·引言 | 第27页 |
| ·实验材料与方法 | 第27-32页 |
| ·钛粉浆的制备 | 第27页 |
| ·板状多孔钛的制备 | 第27-29页 |
| ·多孔钛毛细管的制备 | 第29页 |
| ·多孔钛的结构和性能检测 | 第29-30页 |
| ·生坯的形貌及其影响因素 | 第30-32页 |
| ·多孔钛的物相分析 | 第32-34页 |
| ·多孔钛的孔隙特征及其影响因素 | 第34-42页 |
| ·硬脂酸锌对多孔钛形貌及孔隙特征的影响 | 第34-36页 |
| ·提拉速度对多孔钛形貌及孔隙特征的影响 | 第36-39页 |
| ·烧结温度对多孔钛形貌及孔隙特征的影响 | 第39-42页 |
| ·多孔钛的力学性能及其影响因素 | 第42-44页 |
| ·硬质酸锌对多孔钛的力学性能的影响 | 第42页 |
| ·提拉速度对多孔钛的力学性能的影响 | 第42-43页 |
| ·烧结温度对多孔钛的力学性能的影响 | 第43-44页 |
| ·多孔钛的过滤性能及其影响因素 | 第44-46页 |
| ·硬脂酸锌对多孔膜过滤性能的影响 | 第44页 |
| ·提拉速度对多孔钛过滤性能的影响 | 第44-45页 |
| ·烧结温度对多孔钛过滤性能的影响 | 第45-46页 |
| ·本章小结 | 第46-48页 |
| 第三章 多孔TiO_2/Ti 复合膜的制备及其免疫隔离效果 | 第48-68页 |
| ·引言 | 第48-49页 |
| ·实验材料和方法 | 第49-51页 |
| ·TiO_2 溶胶的制备 | 第49页 |
| ·TiO_2/Ti 复合膜的制备 | 第49页 |
| ·复合膜的渗透分离实验 | 第49-51页 |
| ·TiO_2/Ti 复合膜的特征及其影响因素 | 第51-60页 |
| ·基底微结构对TiO_2/Ti 复合膜形貌的影响 | 第51-54页 |
| ·涂膜次数对TiO_2/Ti 复合膜的影响 | 第54-55页 |
| ·提拉速度对TiO_2/Ti 复合膜的影响 | 第55-58页 |
| ·烧结温度对TiO_2/Ti 复合膜的影响 | 第58-60页 |
| ·复合膜的免疫隔离效果及其影响因素 | 第60-65页 |
| ·烧结温度对免疫隔离效果的影响 | 第60-63页 |
| ·基底孔隙特征对免疫隔离效果的影响 | 第63-64页 |
| ·涂膜次数对免疫隔离效果的影响 | 第64-65页 |
| ·本章小结 | 第65-68页 |
| 第四章 TiO_2/Ti 复合膜的生物活性 | 第68-81页 |
| ·引言 | 第68-69页 |
| ·实验材料与方法 | 第69-71页 |
| ·TiO_2/Ti 复合膜的制备 | 第69页 |
| ·大鼠下丘脑神经细胞的分离 | 第69页 |
| ·大鼠下丘脑神经细胞的原代培养 | 第69-70页 |
| ·下丘脑神经细胞的传代培养 | 第70页 |
| ·原代下丘脑神经细胞的生物学特征及功能检测 | 第70页 |
| ·传代下丘脑神经细胞的生物学特征及功能检测 | 第70页 |
| ·统计学处理 | 第70-71页 |
| ·TiO_2/Ti 复合膜表面物相分析 | 第71-72页 |
| ·原代下丘脑神经细胞形态 | 第72-74页 |
| ·传代下丘脑神经细胞形态 | 第74-79页 |
| ·接种初期的下丘脑神经细胞形态 | 第74-75页 |
| ·纯锐钛矿型TiO_2/Ti 复合膜上的神经细胞形态 | 第75页 |
| ·纯金红石型TiO_2/Ti 复合膜上的神经细胞形态 | 第75-77页 |
| ·混合晶型TiO_2/Ti 复合膜上的神经细胞形态 | 第77页 |
| ·下丘脑神经细胞的分泌功能 | 第77-79页 |
| ·本章小结 | 第79-81页 |
| 第五章 人工细胞封装及体外研究 | 第81-106页 |
| ·引言 | 第81页 |
| ·实验材料与方法 | 第81-86页 |
| ·圆饼形人工细胞的制备方法 | 第81-82页 |
| ·管状人工细胞的制备方法 | 第82页 |
| ·人工细胞的强度实验 | 第82-83页 |
| ·细胞毒性实验 | 第83页 |
| ·人工细胞免疫隔离效果实验 | 第83-84页 |
| ·人工下丘脑神经细胞的制备 | 第84页 |
| ·人工下丘脑神经细胞的体外研究 | 第84-85页 |
| ·人工胰岛细胞的制备 | 第85页 |
| ·人工胰岛细胞的体外研究 | 第85-86页 |
| ·统计学处理 | 第86页 |
| ·人工细胞的强度 | 第86-93页 |
| ·封装后的人工细胞 | 第86-87页 |
| ·圆饼形人工细胞的强度 | 第87-88页 |
| ·管状人工细胞的强度 | 第88-93页 |
| ·人工细胞的免疫隔离效果 | 第93-96页 |
| ·人工细胞对免疫细胞的隔离效果 | 第93-94页 |
| ·人工细胞对免疫大分子物质的隔离效果 | 第94-96页 |
| ·人工下丘脑神经细胞的功能 | 第96-102页 |
| ·人工下丘脑神经细胞的分泌功能 | 第96-99页 |
| ·离体大鼠回肠的戒断性收缩 | 第99-101页 |
| ·人工下丘脑神经细胞治愈毒瘾的可行性分析 | 第101-102页 |
| ·人工胰岛细胞功能 | 第102-104页 |
| ·本章小结 | 第104-106页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第106-111页 |
| ·引言 | 第106页 |
| ·主要研究内容及结论 | 第106-109页 |
| ·本课题的创新点 | 第109-110页 |
| ·展望 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-124页 |
| 附录1 实验设备及试剂 | 第124-126页 |
| 附录2 下丘脑神经细胞染色方法 | 第126-127页 |
| 附录3 β-内啡肽检测方法 | 第127-128页 |
| 附录4 攻读博士学位期间发表论文情况 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
