| 致谢 | 第1-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| 1 绪论 | 第13-37页 |
| ·细菌鞭毛的组装及其分子特性 | 第13-29页 |
| ·细菌鞭毛的类型、结构 | 第13-15页 |
| ·细菌鞭毛的组装过程 | 第15-18页 |
| ·细菌鞭毛组装的基因表达与调控 | 第18-25页 |
| ·鞭毛的功能 | 第25-27页 |
| ·鞭毛蛋白的修饰 | 第27-29页 |
| ·小结 | 第29页 |
| ·细菌的褶皱表型 | 第29-34页 |
| ·本研究的背景、主要内容及意义 | 第34-37页 |
| 2 S.oneidensis鞭毛组装的分子特性 | 第37-62页 |
| ·材料和方法 | 第38-41页 |
| ·菌株,质粒和培养条件 | 第38-39页 |
| ·构建和回补阅读框敲除的突变体 | 第39页 |
| ·生理学特性检测 | 第39-40页 |
| ·电子显微镜观察 | 第40页 |
| ·β-半乳糖苷酶活性检测 | 第40页 |
| ·细菌双杂交试验 | 第40页 |
| ·免疫印迹试验 | 第40-41页 |
| ·鉴定受σ~(28)控制的鞭毛基因 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-58页 |
| ·Shewanella菌鞭毛基因的计算机分析 | 第41-47页 |
| ·构建适合鞭毛基因回补的质粒 | 第47-48页 |
| ·S.oneidensis的FlgK | 第48-49页 |
| ·鞭毛蛋白亚基的功能 | 第49-51页 |
| ·σ~(28)对flaA和flaB的调控 | 第51-53页 |
| ·FlaA和FlaB在其它水平上的表达与调控机制 | 第53-55页 |
| ·FliS与FlaA和FlaB的相互作用 | 第55-57页 |
| ·FlaA和FlaB的糖基化对运动性的影响 | 第57页 |
| ·SO3234的作用 | 第57-58页 |
| ·讨论 | 第58-62页 |
| 3 S.oneidensis MR-1非运动褶皱表型形成的机理 | 第62-82页 |
| ·材料和方法 | 第63-69页 |
| ·菌株,质粒,培养基和生长条件 | 第63页 |
| ·筛选褶皱菌株 | 第63-64页 |
| ·褶皱性和运动性分析 | 第64页 |
| ·鉴定突变基因 | 第64页 |
| ·检测HG-X1中的突变基因 | 第64页 |
| ·回补验证和构建阅读框删除的突变体 | 第64页 |
| ·构建具有光滑表型的双突变体 | 第64-65页 |
| ·提取和定量EPS和胞外蛋白 | 第65-66页 |
| ·薄层色谱分析(TLC) | 第66页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第66页 |
| ·胶内蛋白测序 | 第66页 |
| ·蛋白质免疫印迹 | 第66-69页 |
| ·结果与分析 | 第69-78页 |
| ·HG-X1具有非运动褶皱表型 | 第69页 |
| ·非运动褶皱的菌株的筛选及其突变的基因的鉴定 | 第69-72页 |
| ·鞭毛蛋白基因突变及其它鞭毛基因突变对非运动褶皱表型的影响 | 第72-73页 |
| ·鞭毛蛋白糖基化基因对非运动褶皱表型的影响 | 第73页 |
| ·不同表型菌株的胞外多糖(EPS)的质量和成分的比较分析 | 第73-74页 |
| ·胞外蛋白的比较分析 | 第74-77页 |
| ·鞭毛蛋白比较分析 | 第77-78页 |
| ·讨论 | 第78-82页 |
| 4 论文总结 | 第82-85页 |
| ·主要研究结论 | 第82-83页 |
| ·创新之处 | 第83页 |
| ·不足与展望 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-105页 |
| Summary | 第105-107页 |
| 附录 | 第107-110页 |
| 攻读博士期间发表的论文情况 | 第110-111页 |
| 个人简历 | 第111页 |
