英文缩写一览表 | 第7-9页 |
全文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
第一部分 靶向树突状细胞的卵清蛋白纳米疫苗诱导免疫耐受的研究 | 第14-64页 |
前言 | 第14-17页 |
参考文献 | 第16-17页 |
第1章 PLGA纳米小球的制备及表征研究 | 第17-31页 |
1. 引言 | 第17-18页 |
2. 实验材料和主要仪器 | 第18-19页 |
2.1 实验材料 | 第18页 |
2.2 实验仪器 | 第18-19页 |
3. 实验方法 | 第19-21页 |
3.1 PLGA-OVA纳米小球的制备 | 第19页 |
3.2 三种纳米小球的表征分析 | 第19-20页 |
3.3 纳米小球的OVA过敏原释放动力学测定 | 第20页 |
3.4 纳米小球细胞毒性实验 | 第20-21页 |
3.5 统计学分析 | 第21页 |
4. 实验结果 | 第21-26页 |
4.1 PLGA纳米小球粒径大小测定 | 第21-22页 |
4.2 Zeta电位测定 | 第22页 |
4.3 纳米小球宏观形态观察 | 第22-23页 |
4.4 纳米小球微观形态观察 | 第23-24页 |
4.5 纳米小球OVA包封率测定 | 第24页 |
4.6 纳米小球OVA释放动力学测定 | 第24-25页 |
4.7 纳米小球细胞毒性实验 | 第25-26页 |
5. 讨论 | 第26-28页 |
参考文献 | 第28-31页 |
第2章 PLGA纳米小球活化树突状细胞的研究 | 第31-52页 |
1. 引言 | 第31-32页 |
2. 实验材料及仪器 | 第32-33页 |
2.1 实验材料 | 第32页 |
2.2 实验仪器 | 第32-33页 |
3. 实验方法 | 第33-37页 |
3.1 体外MoDC诱导 | 第33-34页 |
3.2 MoDCs对PLGA-OVA纳米小球的摄取 | 第34-35页 |
3.3 PLGA-OVA纳米小球对MoDCs活化的影响 | 第35-37页 |
3.4 统计方法 | 第37页 |
4. 实验结果 | 第37-47页 |
4.1 MoDC与纳米小球的结合 | 第37-39页 |
4.2 纳米小球对MoDC活化的影响 | 第39-47页 |
5. 讨论 | 第47-49页 |
参考文献 | 第49-52页 |
第3章 PLGA纳米小球对T细胞极化的影响 | 第52-64页 |
1. 引言 | 第52-53页 |
2. 实验材料和仪器 | 第53页 |
2.1 实验材料 | 第53页 |
2.2 实验仪器 | 第53页 |
3. 实验方法 | 第53-55页 |
3.1 NaiveT细胞分离 | 第53-54页 |
3.2 细胞培养 | 第54页 |
3.3 PLGA纳米小球对T细胞极化的影响 | 第54-55页 |
3.4 统计学分析 | 第55页 |
4. 实验结果 | 第55-59页 |
5. 讨论 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-64页 |
第二部分 特应性皮炎患者皮肤、口腔、肠道菌群特征及相关性研究 | 第64-82页 |
1. 引言 | 第64-65页 |
2. 实验方法 | 第65-66页 |
2.1 研究对象和样本采集 | 第65页 |
2.2 DNA提取和16SrRNA扩增子测序 | 第65页 |
2.3 16s rRNA测序数据处理 | 第65页 |
2.4 应用溯源分析找到部位间菌群可能的起源 | 第65-66页 |
2.5 随机森林分类 | 第66页 |
2.6 菌群结构网络 | 第66页 |
2.7 利用16S数据进行功能预测 | 第66页 |
2.8 统计方法 | 第66页 |
3. 实验结果 | 第66-76页 |
3.1 AD患者皮肤、口腔菌群多样性不同程度降低 | 第67页 |
3.2 AD患者皮肤菌群和口腔菌群有更密切的谱系关系 | 第67-69页 |
3.3 AD患者三部位间不同丰度的特异性菌群 | 第69-73页 |
3.4 特异性菌群和AD相关临床参数间的关系 | 第73-75页 |
3.5 AD患者皮肤和口腔菌群在功能预测中呈负相关关系 | 第75-76页 |
4. 讨论 | 第76-78页 |
参考文献 | 第78-82页 |
全文小结 | 第82-84页 |
综述 | 第84-92页 |
参考文献 | 第88-92页 |
研究生阶段已发表及待发表论文 | 第92-93页 |
致谢 | 第93-95页 |