| 中文摘要 | 第4-8页 |
| abstract | 第8-11页 |
| 缩略词表 | 第12-21页 |
| 第1章 Retro-2~(cycl)和Retro-2.1对EV71的抗病毒作用研究 | 第21-71页 |
| 第1节 前言 | 第21-40页 |
| 1.1 手足口病简介 | 第21-22页 |
| 1.1.1 手足口病临床症状 | 第21页 |
| 1.1.2 手足口病流行情况 | 第21-22页 |
| 1.1.3 手足口病致病原 | 第22页 |
| 1.2 EV71简介 | 第22-29页 |
| 1.2.1 EV71分子生物学特性 | 第22-23页 |
| 1.2.2 EV71生命周期 | 第23-26页 |
| 1.2.3 EV71致病性 | 第26-27页 |
| 1.2.4 EV71流行病学 | 第27-29页 |
| 1.3 EV71的预防与治疗 | 第29-34页 |
| 1.3.1 EV71预防性疫苗 | 第29-30页 |
| 1.3.2 EV71临床治疗方法 | 第30-31页 |
| 1.3.3 EV71抗病毒药物研究进展 | 第31-34页 |
| 1.4 Retro-2~(cycl)和Retro-2.1简介 | 第34-38页 |
| 1.4.1 Retro-2~(cycl)的发现 | 第34-37页 |
| 1.4.2 Retro-2~(cycl)及Retro-2.1的研究进展 | 第37-38页 |
| 1.5 立题依据 | 第38-40页 |
| 1.6 实验设计 | 第40页 |
| 第2节 实验材料与方法 | 第40-55页 |
| 2.1 实验材料 | 第40-44页 |
| 2.1.1 化合物、病毒株、细胞系及动物 | 第40-41页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第41-42页 |
| 2.1.3 主要溶液 | 第42-43页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第43页 |
| 2.1.5 引物设计 | 第43-44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-55页 |
| 2.2.1293 S细胞培养 | 第44页 |
| 2.2.2 EV71病毒扩增及滴度测定 | 第44-46页 |
| 2.2.3 细胞半数毒性浓度(CC_(50))测定 | 第46页 |
| 2.2.4 细胞病变效应半数有效浓度(EC_(50))测定 | 第46-47页 |
| 2.2.5 病毒空斑效应半数有效浓度(EC_(50))测定 | 第47-48页 |
| 2.2.6 病毒核酸提取与定量反转录-聚合酶链式反应(qRT-PCR) | 第48-50页 |
| 2.2.7 基于EV71-EGFP的病毒蛋白含量测定 | 第50页 |
| 2.2.8 药物时间添加实验 | 第50-52页 |
| 2.2.9 药物对病毒晚期阶段的作用分析 | 第52页 |
| 2.2.10 细胞免疫荧光实验 | 第52-53页 |
| 2.2.11 EV71对新生BALB/c乳鼠半数致死剂量(LD50)测定 | 第53-54页 |
| 2.2.12 Retro-2~(cycl)对EV71所致新生BALB/c乳鼠感染保护效果测定 | 第54页 |
| 2.2.13 统计学分析方法 | 第54-55页 |
| 第3节 实验结果 | 第55-67页 |
| 3.1 EV71病毒滴度检测结果 | 第55页 |
| 3.2 Retro-2~(cycl)及Retro-2.1对EV71所致293S细胞感染的抑制作用 | 第55-60页 |
| 3.2.1 药物细胞毒性 | 第55-56页 |
| 3.2.2 药物对细胞病变效应的抑制作用 | 第56-57页 |
| 3.2.3 药物对病毒空斑效应的抑制作用 | 第57-59页 |
| 3.2.4 EV71核酸复制 | 第59页 |
| 3.2.5 EV71蛋白合成 | 第59-60页 |
| 3.3 Retro-2~(cycl)及Retro-2.1对EV71的作用机制 | 第60-63页 |
| 3.3.1 对EV71生命周期作用阶段的确定 | 第60-62页 |
| 3.3.2 对EV71子代病毒释放的作用 | 第62-63页 |
| 3.4 Retro-2~(cycl)对EV71所致新生BALB/c乳鼠感染的保护效果检测 | 第63-67页 |
| 3.4.1 EV71的新生BALB/c乳鼠感染模型建立 | 第63-65页 |
| 3.4.2 乳鼠临床症状检测 | 第65-66页 |
| 3.4.3 乳鼠生存率检测 | 第66页 |
| 3.4.4 乳鼠体重检测 | 第66-67页 |
| 第4节 讨论 | 第67-69页 |
| 第5节 小结 | 第69-71页 |
| 第2章 黄酮类化合物对EV71的抗病毒作用研究 | 第71-93页 |
| 第1节 前言 | 第71-76页 |
| 1.1 黄酮类化合物简介 | 第71-74页 |
| 1.1.1 黄酮类化合物结构 | 第71-72页 |
| 1.1.2 黄酮类化合物生物活性 | 第72-74页 |
| 1.2 黄酮类化合物对EV71的抗病毒作用研究进展 | 第74-75页 |
| 1.3 立题依据 | 第75-76页 |
| 1.4 实验设计 | 第76页 |
| 第2节 实验材料与方法 | 第76-81页 |
| 2.1 实验材料 | 第76-77页 |
| 2.2 实验方法 | 第77-81页 |
| 2.2.1 细胞半数毒性浓度(CC_(50))测定 | 第77页 |
| 2.2.2 细胞病变效应半数有效浓度(EC_(50))测定 | 第77-78页 |
| 2.2.3 病毒核酸提取与定量反转录-聚合酶链式反应(qRT-PCR) | 第78-79页 |
| 2.2.4 基于EV71-luc的病毒蛋白含量测定 | 第79-80页 |
| 2.2.5 黄酮类化合物对EV71所致新生BALB/c乳鼠感染保护效果测定 | 第80-81页 |
| 2.2.6 统计学分析方法 | 第81页 |
| 第3节 实验结果 | 第81-90页 |
| 3.1 黄酮类化合物对EV71所致293S细胞感染的抑制作用. | 第81-85页 |
| 3.1.1 药物细胞毒性 | 第81-82页 |
| 3.1.2 药物对细胞病变效应的抑制作用 | 第82-84页 |
| 3.1.3 EV71核酸复制 | 第84页 |
| 3.1.4 EV71蛋白合成 | 第84-85页 |
| 3.2 黄酮类化合物对EV71所致新生BALB/c乳鼠感染的保护效果检测 | 第85-90页 |
| 3.2.1 乳鼠临床症状检测 | 第85-86页 |
| 3.2.2 乳鼠生存率检测 | 第86页 |
| 3.2.3 乳鼠体重检测 | 第86-90页 |
| 第4节 讨论 | 第90-91页 |
| 第5节 小结 | 第91-93页 |
| 第3章 ABMA对HSV-2的抗病毒作用研究 | 第93-143页 |
| 第1节 前言 | 第93-108页 |
| 1.1 生殖器疱疹简介 | 第93页 |
| 1.2 HSV-2简介 | 第93-101页 |
| 1.2.1 HSV-2分子生物学特征 | 第93-95页 |
| 1.2.2 HSV-2生命周期 | 第95-98页 |
| 1.2.3 HSV-2致病性 | 第98-100页 |
| 1.2.4 HSV-2流行病学 | 第100-101页 |
| 1.3 HSV-2感染的预防和治疗 | 第101-104页 |
| 1.3.1 HSV-2预防性及治疗性疫苗 | 第101-102页 |
| 1.3.2 HSV-2临床治疗方法 | 第102-103页 |
| 1.3.3 HSV-2抗病毒药物研究进展 | 第103-104页 |
| 1.4 ABMA简介 | 第104-105页 |
| 1.4.1 ABMA的发现 | 第104页 |
| 1.4.2 ABMA的研究进展 | 第104-105页 |
| 1.5 立题依据 | 第105-107页 |
| 1.6 实验设计 | 第107-108页 |
| 第2节 实验材料与方法 | 第108-125页 |
| 2.1 实验材料 | 第108-112页 |
| 2.1.1 化合物、病毒株、细胞系及动物 | 第108-109页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第109-110页 |
| 2.1.3 主要溶液 | 第110-111页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第111-112页 |
| 2.1.5 引物设计 | 第112页 |
| 2.2 实验方法 | 第112-125页 |
| 2.2.1 Vero细胞培养 | 第112-113页 |
| 2.2.2 HSV-2病毒扩增及滴度测定 | 第113-114页 |
| 2.2.3 细胞半数毒性浓度(CC_(50))测定 | 第114-115页 |
| 2.2.4 细胞病变效应半数有效浓度(EC_(50))测定 | 第115-116页 |
| 2.2.5 病毒空斑效应半数有效浓度(EC_(50))测定 | 第116-117页 |
| 2.2.6 病毒核酸提取与定量聚合酶链式反应(qPCR) | 第117-118页 |
| 2.2.7 聚丙烯酰胺凝胶电泳与蛋白免疫印迹 | 第118-119页 |
| 2.2.8 药物时间添加实验 | 第119-120页 |
| 2.2.9 药物对病毒吸附与进入作用分析 | 第120-121页 |
| 2.2.10 药物对病毒晚期阶段的作用分析 | 第121-122页 |
| 2.2.11 细胞免疫荧光实验 | 第122-123页 |
| 2.2.12 HSV-2对BALB/c雌鼠半数致死剂量(LD50)测定 | 第123页 |
| 2.2.13 ABMA对HSV-2所致BALB/c雌鼠感染保护效果测定 | 第123-124页 |
| 2.2.14 统计学分析方法 | 第124-125页 |
| 第3节 实验结果 | 第125-139页 |
| 3.1 HSV-2病毒滴度结果 | 第125页 |
| 3.2 ABMA对HSV-2对细胞感染的抑制作用 | 第125-130页 |
| 3.2.1 药物细胞毒性 | 第125-126页 |
| 3.2.2 药物对细胞病变效应的抑制作用 | 第126-128页 |
| 3.2.3 药物对病毒空斑效应的抑制作用 | 第128页 |
| 3.2.4 HSV-2核酸复制 | 第128-129页 |
| 3.2.5 HSV-2蛋白合成 | 第129-130页 |
| 3.3 ABMA对HSV-2的作用机制 | 第130-135页 |
| 3.3.1 对HSV-2生命周期作用阶段的确定 | 第130-131页 |
| 3.3.2 对HSV-2吸附与进入的作用 | 第131-133页 |
| 3.3.3 对HSV-2晚期阶段的作用 | 第133-135页 |
| 3.4 ABMA对HSV-2所致BALB/c雌鼠感染的保护效果 | 第135-139页 |
| 3.4.1 HSV-2对BALB/c雌鼠感染模型建立 | 第135-137页 |
| 3.4.2 雌鼠临床症状 | 第137页 |
| 3.4.3 雌鼠生殖道病毒载量 | 第137-138页 |
| 3.4.4 雌鼠生存率 | 第138-139页 |
| 第4节 讨论 | 第139-141页 |
| 第5节 小结 | 第141-143页 |
| 结论 | 第143-145页 |
| 参考文献 | 第145-159页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第159-161页 |
| 致谢 | 第161-162页 |
