| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 趋化因子的分类 | 第11-17页 |
| 1.1.1 根据蛋白质的一级结构进行分类 | 第11-16页 |
| 1.1.2 根据趋化因子来源和功能分类 | 第16-17页 |
| 1.2 趋化因子受体 | 第17-19页 |
| 1.3 趋化因子的功能 | 第19-20页 |
| 1.4 巨噬细胞炎性蛋白-2（MIP-2）研究进展 | 第20-22页 |
| 1.4.1 MIP-2 的发现及其结构特点 | 第20页 |
| 1.4.2 巨噬细胞释放 MIP-2 的过程 | 第20-21页 |
| 1.4.3 MIP-2 的生物学功能 | 第21-22页 |
| 1.5 本研究的目的和内容 | 第22-23页 |
| 2 香鱼 MIP-2 基因的序列分析 | 第23-26页 |
| 2.1 MIP-2 基因的序列分析方法 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-26页 |
| 3 香鱼 MIP-2 基因 mRNA 的组织表达特征分析及鳗利斯顿氏菌感染与香鱼 MIP-2 表达的相关性分析 | 第26-33页 |
| 3.1 材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 3.1.2 试剂和酶 | 第26页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第26-27页 |
| 3.1.4 菌株 | 第27页 |
| 3.1.5 材料制备 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 3.2.1 香鱼总 RNA 抽提 | 第27-28页 |
| 3.2.2 cDNA 的合成 | 第28-29页 |
| 3.2.3 引物设计与合成 | 第29页 |
| 3.2.4 聚合酶链式反应（PCR）反应体系及程序 | 第29-30页 |
| 3.3 结果与分析 | 第30-32页 |
| 3.3.1 香鱼 MIP-2 基因 mRNA 组织表达特征 | 第30页 |
| 3.3.2 鳗利斯顿氏菌侵染健康香鱼后各组织 MIP-2 基因 mRNA 的表达变化情况 | 第30-32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-33页 |
| 4 香鱼 MIP-2 基因原核表达、抗血清的制备 | 第33-45页 |
| 4.1 材料 | 第33页 |
| 4.2 方法 | 第33-42页 |
| 4.2.1 聚合酶链式反应（PCR） | 第33-34页 |
| 4.2.2 PCR 产物的纯化 | 第34-35页 |
| 4.2.3 T-A 克隆 | 第35页 |
| 4.2.4 制备感受态细胞（CaCl2法） | 第35页 |
| 4.2.5 转化与筛选 | 第35-36页 |
| 4.2.6 质粒提取 | 第36页 |
| 4.2.7 重组质粒的 PCR 鉴定 | 第36-37页 |
| 4.2.8 原核表达载体构建 | 第37-38页 |
| 4.2.9 诱导表达 | 第38-39页 |
| 4.2.10 抗血清制备 | 第39-42页 |
| 4.3 结果与分析 | 第42-44页 |
| 4.3.1 原核表达载体构建 | 第42-43页 |
| 4.3.2 重组质粒诱导表达 | 第43页 |
| 4.3.3 抗血清验证 | 第43-44页 |
| 4.4 讨论 | 第44-45页 |
| 5 结论 | 第45-47页 |
| 5.1 研究成果 | 第45页 |
| 5.2 展望 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 在学研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
