| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论(线粒体运输与斑马鱼轴突再生) | 第9-19页 |
| 1.1 线粒体 | 第9-13页 |
| 1.1.1 线粒体的基本特征 | 第9页 |
| 1.1.2 神经元中线粒体的功能 | 第9-10页 |
| 1.1.3 神经元中线粒体的运输 | 第10-12页 |
| 1.1.4 观察神经元内线粒体动态变化的常用模型 | 第12-13页 |
| 1.2 毛特纳细胞 | 第13-15页 |
| 1.2.1 毛特纳细胞的结构与功能 | 第13-14页 |
| 1.2.2 毛特纳细胞轴突的损伤与再生 | 第14-15页 |
| 1.3 斑马鱼模型 | 第15-17页 |
| 1.3.1 斑马鱼是独特的模式生物 | 第15页 |
| 1.3.2 作为观测线粒体动态变化模型的应用 | 第15-16页 |
| 1.3.3 CRISPR/Cas9介导的knock in | 第16-17页 |
| 1.4 研究背景与目的 | 第17-19页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第19-39页 |
| 2.1 斑马鱼的饲养及繁殖 | 第19-20页 |
| 2.1.1 斑马鱼饲养 | 第19-20页 |
| 2.1.2 斑马鱼繁殖 | 第20页 |
| 2.2 分子克隆 | 第20-28页 |
| 2.2.1 质粒DNA抽提 | 第20-22页 |
| 2.2.2 DNA纯化 | 第22-24页 |
| 2.2.3 质粒DNA构建 | 第24-28页 |
| 2.3 单细胞电转 | 第28-29页 |
| 2.4 药理学实验nocodazole | 第29-30页 |
| 2.5 激光共聚焦活体成像 | 第30-31页 |
| 2.6 双光子毁损 | 第31页 |
| 2.7 体外RNA合成 | 第31-34页 |
| 2.8 显微注射 | 第34-35页 |
| 2.9 数据处理及分析 | 第35-39页 |
| 2.9.1 图像处理及分析 | 第35-37页 |
| 2.9.2 统计分析 | 第37-39页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第39-53页 |
| 3.1 实验结果 | 第39-48页 |
| 3.1.1 M-cell内线粒体动态运输活体模型的构建 | 第39-40页 |
| 3.1.2 Nocodazole阻碍线粒体运输 | 第40-42页 |
| 3.1.3 M-cell轴突损伤后能够再生 | 第42页 |
| 3.1.4 线粒体运动比例与再生轴突的增长长度呈正相关性 | 第42-43页 |
| 3.1.5 按轴突再生状态分类 | 第43-44页 |
| 3.1.6 轴突再生能力与线粒体运动比例的关系 | 第44-46页 |
| 3.1.7 轴突再生能力与线粒体运输速度的关系 | 第46-47页 |
| 3.1.8 CRISPR/Cas9介导的knock in构建转基因斑马鱼 | 第47-48页 |
| 3.2 讨论 | 第48-53页 |
| 3.2.1 斑马鱼适合神经元内线粒体的活体成像研究 | 第48-49页 |
| 3.2.2 线粒体动态变化与轴突再生密切相关 | 第49-50页 |
| 3.2.3 CRISPR/Cas9介导的knock in助力斑马鱼线粒体研究 | 第50页 |
| 3.2.4 本研究的不足之处及展望 | 第50-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 附录一 缩略词表 | 第61-62页 |
| 附录二 主要原始数据存放及命名 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 个人简历 | 第65页 |
