| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第13-28页 |
| 1.1 课题背景 | 第13-14页 |
| 1.2 Ⅱ型糖尿病的病因与发病机制 | 第14-19页 |
| 1.2.1 发病因素 | 第15-16页 |
| 1.2.2 发病机制 | 第16-19页 |
| 1.3 糖尿病治疗 | 第19-22页 |
| 1.3.1 西药类治疗药物 | 第19-21页 |
| 1.3.2 中药类治疗药物 | 第21-22页 |
| 1.4 丹皮酚的药理作用 | 第22-26页 |
| 1.4.1 丹皮酚的研究现状 | 第22-26页 |
| 1.4.2 小结 | 第26页 |
| 1.5 本文的主要研究内容和意义 | 第26-28页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第26-27页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第27-28页 |
| 第2章 丹皮酚的分离、纯化和鉴定 | 第28-40页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 试验材料 | 第28-29页 |
| 2.2.1 药品和试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 主要试验仪器 | 第29页 |
| 2.3 试验方法 | 第29-32页 |
| 2.3.1 牡丹皮样品中丹皮酚的含量测定 | 第29-30页 |
| 2.3.2 丹皮酚的提取 | 第30-31页 |
| 2.3.3 丹皮酚的纯化 | 第31页 |
| 2.3.4 牡丹皮提取物丹皮酚的鉴定及纯度检测 | 第31-32页 |
| 2.3.5 数据处理 | 第32页 |
| 2.4 试验结果 | 第32-36页 |
| 2.4.1 牡丹皮中丹皮酚含量测定结果 | 第32页 |
| 2.4.2 盐水浸泡-水蒸汽蒸馏法提取丹皮酚结果 | 第32-36页 |
| 2.5 讨论 | 第36-38页 |
| 2.5.1 牡丹根皮中丹皮酚的提取和纯化 | 第36-38页 |
| 2.5.2 牡丹皮中提取物质-丹皮酚的鉴定 | 第38页 |
| 2.6 本章小结 | 第38-40页 |
| 第3章 丹皮酚对II型糖尿病大鼠降糖作用的研究 | 第40-54页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 试验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.1 试验试剂与药品 | 第40-41页 |
| 3.2.2 主要试验仪器 | 第41页 |
| 3.2.3 试验动物 | 第41页 |
| 3.3 试验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 试验用糖尿病大鼠模型的制备及分组 | 第41-42页 |
| 3.3.2 确定动物的给药剂量 | 第42页 |
| 3.3.3 丹皮酚降糖效果的检测 | 第42-43页 |
| 3.3.4 丹皮酚对实验动物血脂影响的检测 | 第43页 |
| 3.3.5 实验动物体重及肝、胰腺、脾脏和肾脏重量的测量 | 第43页 |
| 3.3.6 试验动物血清胰岛素水平的检测 | 第43-44页 |
| 3.3.7 数据统计 | 第44页 |
| 3.4 试验结果 | 第44-48页 |
| 3.4.1 II糖尿病大鼠模型的建立及评价 | 第44-45页 |
| 3.4.2 大鼠葡萄糖耐受量检测结果 | 第45页 |
| 3.4.3 丹皮酚降糖效果测定结果 | 第45-46页 |
| 3.4.4 实验动物血脂检测结果 | 第46-47页 |
| 3.4.5 大鼠肝脏、胰腺、脾脏和肾脏重量变化结果 | 第47页 |
| 3.4.6 血清胰岛素和Hb A1c检测结果 | 第47-48页 |
| 3.5 讨论 | 第48-53页 |
| 3.5.1 Ⅱ型糖尿病大鼠模型的建立 | 第48-49页 |
| 3.5.2 丹皮酚对糖尿病大鼠血糖和血脂的影响 | 第49-50页 |
| 3.5.3 丹皮酚对大鼠肝脏、肾脏、胰腺和脾脏重量的影响 | 第50-51页 |
| 3.5.4 丹皮酚影响Hb A1c含量变化的意义 | 第51-52页 |
| 3.5.5 丹皮酚影响血清胰岛素含量变化意义 | 第52-53页 |
| 3.6 本章小结 | 第53-54页 |
| 第4章 丹皮酚对II型糖尿病大鼠的免疫调节作用 | 第54-76页 |
| 4.1 引言 | 第54-55页 |
| 4.2 材料 | 第55-57页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第55页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第55-56页 |
| 4.2.3 主要试验仪器 | 第56-57页 |
| 4.3 试验方法 | 第57-62页 |
| 4.3.1 糖尿病大鼠模型的建立 | 第57页 |
| 4.3.2 试验动物分组及丹皮酚给药方案 | 第57页 |
| 4.3.3 大鼠脾脏重量指数的测定 | 第57页 |
| 4.3.4 大鼠血常规检测 | 第57-58页 |
| 4.3.5 大鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能试验 | 第58页 |
| 4.3.6 淋巴细胞增值率测定(MTT法) | 第58页 |
| 4.3.7 大鼠外周血T淋巴细胞亚群的检测(流式细胞技术) | 第58-59页 |
| 4.3.8 大鼠外周血中免疫球蛋白及补体C3、C4 的检测 | 第59页 |
| 4.3.9 大鼠血清中炎性细胞因子IL-6、IL-2、TNF-α和TGF-β的检测 | 第59页 |
| 4.3.10 大鼠外周血淋巴细胞中IL-6、IL-2、TNF-α和TGF-β m RNA的表达 | 第59-62页 |
| 4.3.11 统计学分析 | 第62页 |
| 4.4 试验结果 | 第62-69页 |
| 4.4.1 各组大鼠血糖、血脂、糖化血红蛋白和胰岛素含量变化 | 第62-63页 |
| 4.4.2 脾指数检测结果 | 第63-64页 |
| 4.4.3 大鼠血常规白细胞比例检测结果 | 第64-65页 |
| 4.4.4 大鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能检测结果 | 第65页 |
| 4.4.5 大鼠淋巴细胞增值率 | 第65-66页 |
| 4.4.6 流式细胞仪T淋巴细胞亚群检测结果 | 第66页 |
| 4.4.7 免疫球蛋白及补体C3、C4 检测结果 | 第66-67页 |
| 4.4.8 大鼠血清中炎性因子IL-6、IL-2、TNF-α和TGF-β检测结果 | 第67页 |
| 4.4.9 大鼠血中总m RNA的提取及鉴定结果 | 第67-68页 |
| 4.4.10 各组大鼠血中IL-2、IL-6、TNF-α和TGF-β m RNA的表达结果 | 第68-69页 |
| 4.5 讨论 | 第69-75页 |
| 4.5.1 丹皮酚对糖尿病大鼠免疫功能的调节作用 | 第69-70页 |
| 4.5.2 丹皮酚对糖尿病大鼠T淋巴细胞亚群的影响 | 第70-71页 |
| 4.5.3 丹皮酚对糖尿病大鼠血清中免疫球蛋白及补体的影响 | 第71-73页 |
| 4.5.4 丹皮酚对糖尿病大鼠血清中炎性因子含量及表达的影响作用 | 第73-75页 |
| 4.6 本章小结 | 第75-76页 |
| 第5章 丹皮酚对胰岛B细胞增殖分化作用的研究 | 第76-93页 |
| 5.1 引言 | 第76-77页 |
| 5.2 试验材料 | 第77-78页 |
| 5.2.1 试验动物 | 第77页 |
| 5.2.2 试验试剂 | 第77-78页 |
| 5.2.3 试验器械 | 第78页 |
| 5.3 试验方法 | 第78-84页 |
| 5.3.1 动物分组、模型制备及给药方案 | 第78页 |
| 5.3.2 体重和血糖检测 | 第78页 |
| 5.3.3 大鼠血清中胰岛素含量检测 | 第78-79页 |
| 5.3.4 大鼠胰腺组织病理变化检测 | 第79-80页 |
| 5.3.5 检测大鼠胰腺组织相关m RNA的表达变化 | 第80-81页 |
| 5.3.6 胰腺组织中PPARγ、GLP-1、PDX-1、P-JNK、JNK蛋白含量检测 | 第81-84页 |
| 5.3.7 数据分析 | 第84页 |
| 5.4 试验结果 | 第84-88页 |
| 5.4.1 HE染色结果 | 第84-85页 |
| 5.4.2 Western-Boltting检测蛋白表达 | 第85-87页 |
| 5.4.3 RT-PCR检测m RNA的表达结果 | 第87-88页 |
| 5.5 讨论 | 第88-92页 |
| 5.5.1 丹皮酚对PPARγ和JNK1 的影响 | 第89-91页 |
| 5.5.2 丹皮酚对GLP-1 和PDX-1 的影响 | 第91-92页 |
| 5.6 本章小结 | 第92-93页 |
| 结论 | 第93-94页 |
| 创新点及展望与设想 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-106页 |
| 附录 | 第106-108页 |
| 攻读博士学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 作者简介 | 第111页 |
