| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文缩略表 | 第17-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-36页 |
| 1.1 核桃资源的综合开发与利用 | 第18-21页 |
| 1.1.1 核桃资源在食品、保健品领域中的应用 | 第18-19页 |
| 1.1.2 核桃资源在农药领域中的应用 | 第19-20页 |
| 1.1.3 核桃资源在医药领域中的应用 | 第20-21页 |
| 1.2 核桃乳饮品的掺假研究 | 第21-23页 |
| 1.2.1 食品鉴伪研究现状 | 第21-22页 |
| 1.2.2 核桃乳饮品掺假研究 | 第22-23页 |
| 1.3 植物源抑菌活性物质研究进展 | 第23-24页 |
| 1.3.1 植物中起抑菌作用的活性物质 | 第23-24页 |
| 1.3.2 植物源抑菌物质作用机理 | 第24页 |
| 1.4 植物源抗肿瘤活性物质研究进展 | 第24-28页 |
| 1.4.1 植物中起抗肿瘤作用的活性成分 | 第24-26页 |
| 1.4.2 植物源抗肿瘤药物作用机理 | 第26-28页 |
| 1.5 核桃青皮的研究进展 | 第28-34页 |
| 1.5.1 核桃青皮化学成分研究进展 | 第28-31页 |
| 1.5.2 核桃青皮生物学活性研究进展 | 第31-34页 |
| 1.6 本研究的内容及意义 | 第34页 |
| 1.7 实验技术路线 | 第34-36页 |
| 第二章 核桃乳饮品真伪鉴定 | 第36-44页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第36-37页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 2.1.2 药品与试剂 | 第37页 |
| 2.1.3 仪器 | 第37页 |
| 2.2 试验方法 | 第37-38页 |
| 2.2.1 DNA的提取 | 第37页 |
| 2.2.2 引物设计 | 第37-38页 |
| 2.2.3 PCR扩增及产物检测 | 第38页 |
| 2.3 结果与分析 | 第38-42页 |
| 2.3.1 核桃乳(露)中DNA提取效率 | 第38-39页 |
| 2.3.2 引物的特异性 | 第39-40页 |
| 2.3.3 检测方法的灵敏度 | 第40-41页 |
| 2.3.4 核桃乳(露)中花生、大豆成分的检测 | 第41-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-43页 |
| 2.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 核桃青皮提取物对植物病原真菌的抑制活性 | 第44-54页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第44-45页 |
| 3.1.1 供试菌种 | 第44页 |
| 3.1.2 药品与试剂 | 第44页 |
| 3.1.3 培养基 | 第44-45页 |
| 3.1.4 仪器 | 第45页 |
| 3.2 试验方法 | 第45-46页 |
| 3.2.1 核桃青皮粗提物的制备与分离 | 第45页 |
| 3.2.2 真菌抑制活性检测 | 第45-46页 |
| 3.2.3 数据分析 | 第46页 |
| 3.3 结果与分析 | 第46-52页 |
| 3.3.1 核桃青皮乙醇提取物对4种植物病原真菌的抑制作用 | 第46-47页 |
| 3.3.2 核桃青皮各萃取相对4种植物病原真菌的抑制作用 | 第47-50页 |
| 3.3.3 不同浓度乙酸乙酯萃取相对4种植物病原真菌的抑制作用 | 第50-51页 |
| 3.3.4 乙酸乙酯萃取相对4种植物病原真菌生长抑制作用的毒力测定 | 第51-52页 |
| 3.4 讨论 | 第52-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 第四章 核桃青皮提取物对细菌的抑制活性 | 第54-65页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第54-55页 |
| 4.1.1 供试菌种 | 第54页 |
| 4.1.2 药品与试剂 | 第54页 |
| 4.1.3 培养基 | 第54页 |
| 4.1.4 仪器 | 第54-55页 |
| 4.2 试验方法 | 第55-56页 |
| 4.2.1 核桃青皮粗提物的制备与分离 | 第55页 |
| 4.2.2 细菌抑制活性检测 | 第55-56页 |
| 4.3 结果与分析 | 第56-63页 |
| 4.3.1 核桃青皮乙醇提取物对7种细菌的抑制作用 | 第56-57页 |
| 4.3.2 核桃青皮各萃取相对7种细菌的抑制作用 | 第57-61页 |
| 4.3.3 不同浓度乙酸乙酯萃取相对7种细菌的抑制作用 | 第61-62页 |
| 4.3.4 乙酸乙酯萃取相对7种细菌的MIC和MBC | 第62-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63页 |
| 4.5 本章小结 | 第63-65页 |
| 第五章 核桃青皮提取物抑菌作用调控及抑菌机理的初步研究 | 第65-76页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第65-66页 |
| 5.1.1 供试菌种 | 第65页 |
| 5.1.2 药品与试剂 | 第65页 |
| 5.1.3 培养基 | 第65-66页 |
| 5.1.4 仪器 | 第66页 |
| 5.2 试验方法 | 第66-68页 |
| 5.2.1 待测液制备 | 第66页 |
| 5.2.2 菌种的活化 | 第66页 |
| 5.2.3 菌悬液的制备 | 第66页 |
| 5.2.4 抑菌调控作用的检测 | 第66-67页 |
| 5.2.5 抑菌机理初步研究 | 第67-68页 |
| 5.3 结果与分析 | 第68-74页 |
| 5.3.1 抑菌调控作用的检测 | 第68-71页 |
| 5.3.2 抑菌机理的初步研究 | 第71-74页 |
| 5.4 讨论 | 第74-75页 |
| 5.5 本章小结 | 第75-76页 |
| 第六章 核桃青皮提取物对肿瘤细胞的抑制活性 | 第76-86页 |
| 6.1 材料与仪器 | 第76-78页 |
| 6.1.1 供试细胞 | 第76页 |
| 6.1.2 药品与试剂 | 第76-77页 |
| 6.1.3 仪器 | 第77页 |
| 6.1.4 主要溶液配制 | 第77-78页 |
| 6.2 试验方法 | 第78-80页 |
| 6.2.1 核桃青皮粗提物的制备与分离 | 第78页 |
| 6.2.2 体外筛选核桃青皮粗提物的抗肿瘤活性部位 | 第78-80页 |
| 6.3 结果与分析 | 第80-83页 |
| 6.3.1 核桃青皮各萃取相对Hela和Huh7.5.1细胞的抑制作用 | 第80-82页 |
| 6.3.2 HCPT以及核桃青皮各萃取相对Huh7和Hela细胞的IC_(50) | 第82页 |
| 6.3.3 Hoechst 33342染色观察Huh7.5.1细胞形态 | 第82-83页 |
| 6.4 讨论 | 第83-85页 |
| 6.5 本章小结 | 第85-86页 |
| 第七章 结论 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-98页 |
| 附录A 抑菌图片 | 第98-101页 |
| 附录B 攻读硕士期间发表论文情况目录 | 第101页 |
