| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第1章 综述 组织工程骨支架材料的研究进展 | 第14-20页 |
| 1.1 生物衍生支架材料 | 第15-17页 |
| 1.1.1 海藻酸盐 | 第15页 |
| 1.1.2 壳聚糖 | 第15-16页 |
| 1.1.3 珊瑚羟基磷灰石 | 第16页 |
| 1.1.4 天然骨 | 第16-17页 |
| 1.2 高分子支架材料 | 第17页 |
| 1.3 无机支架材料 | 第17-19页 |
| 1.3.1 羟基磷灰石 | 第17-18页 |
| 1.3.2 生物陶瓷β-磷酸三钙 | 第18页 |
| 1.3.3 磷酸钙骨水泥 | 第18页 |
| 1.3.4 生物活性玻璃 | 第18-19页 |
| 1.4 复合支架材料 | 第19-20页 |
| 第2章 HPMSCs的分离、培养及鉴定 | 第20-27页 |
| 2.1 实验材料、主要实验仪器及试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.1 组织来源 | 第20页 |
| 2.1.2 主要实验仪器及试剂 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 主要试剂的配制 | 第21-22页 |
| 2.2.2 HPMSCs的分离及培养 | 第22页 |
| 2.2.3 绘制细胞生长曲线 | 第22页 |
| 2.2.4 成骨诱导分化 | 第22-23页 |
| 2.2.5 成脂诱导分化 | 第23页 |
| 2.3 结果 | 第23-25页 |
| 2.3.1 HPMSCs的分离培养 | 第23-24页 |
| 2.3.2 细胞生长曲线 | 第24页 |
| 2.3.3 成骨诱导分化检测 | 第24-25页 |
| 2.3.4 成脂诱导分化检测 | 第25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-27页 |
| 第3章 微球型可塑性骨支架材料的制备 | 第27-38页 |
| 3.2 实验材料 | 第27-31页 |
| 3.2.1 双重载药多层SA-CS缓释微球的制备 | 第28-29页 |
| 3.2.2 缓释微球型支架的制备 | 第29-30页 |
| 3.2.3 支架材料的表征 | 第30页 |
| 3.2.4 采用乙醇位移法测定支架孔隙率 | 第30-31页 |
| 3.2.5 测定支架收缩率 | 第31页 |
| 3.2.6 支架材料溶胀度的测定 | 第31页 |
| 3.3 结果 | 第31-36页 |
| 3.3.1 微球及支架形态观察、FTIR分析 | 第31-34页 |
| 3.3.2 支架孔隙率 | 第34-35页 |
| 3.3.3 支架材料收缩率的测定 | 第35页 |
| 3.3.4 支架材料溶胀度测定 | 第35-36页 |
| 3.4 讨论 | 第36-38页 |
| 第4章 微球型支架对HPMSCs增殖与成骨分化的影响 | 第38-44页 |
| 4.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.2 实验方法 | 第38-39页 |
| 4.2.1 微球型支架对HPMSCs增殖活性的影响 | 第38-39页 |
| 4.2.2 微球型支架对HPMSCs成骨分化的影响 | 第39页 |
| 4.3 统计学分析 | 第39页 |
| 4.4 结果 | 第39-42页 |
| 4.4.1 与微球型支架浸出液共培养后HPMSCs的形态 | 第39-40页 |
| 4.4.2 与微球型支架浸出液共培养后HPMSCs增殖活性 | 第40页 |
| 4.4.3 共培养后HPMSCs成骨诱导茜素红染色及ALP活性检测 | 第40-42页 |
| 4.5 讨论 | 第42-44页 |
| 第5章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
