| 摘要 | 第2-3页 |
| ABSTRACT | 第3-4页 |
| 缩略词表 | 第5-8页 |
| 文献综述 | 第8-19页 |
| 1 甘肃河西走廊地区概况 | 第8页 |
| 2 真菌毒素的简介 | 第8-14页 |
| 2.1 赭曲霉毒素（OT） | 第9页 |
| 2.2 青霉酸（PCA） | 第9-10页 |
| 2.3 环匹阿尼酸（CPA） | 第10页 |
| 2.4 洛伐他汀（MEO） | 第10页 |
| 2.5 玉米赤霉烯酮（ZEN） | 第10页 |
| 2.6 霉酚酸（MPA） | 第10-11页 |
| 2.7 柄曲霉素（STE） | 第11页 |
| 2.8 单端孢霉烯族毒素 | 第11-12页 |
| 2.9 桔霉素（CTN） | 第12页 |
| 2.10 黄曲霉毒素（AFTs） | 第12-13页 |
| 2.11 伏马毒素（FB1） | 第13-14页 |
| 3 真菌毒素提取及检测方法简介 | 第14-16页 |
| 3.1 酶联免疫法（ELISA） | 第14页 |
| 3.2 薄层色谱法（TLC） | 第14-15页 |
| 3.3 气相色谱法（GC） | 第15页 |
| 3.4 液相色谱法（HPLC） | 第15页 |
| 3.5 超高效液相色谱串联质谱法（UHPLC-MS/MS） | 第15页 |
| 3.6 QuEChERS方法 | 第15-16页 |
| 4 真菌毒素在酒及其原料中的污染现状 | 第16-17页 |
| 5 研究内容及技术路线 | 第17-19页 |
| 5.1 研究内容 | 第17-18页 |
| 5.2 技术路线 | 第18-19页 |
| 1 前言 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-26页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 试验样品 | 第20页 |
| 2.1.2 供检测目标物及净化剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 试剂与设备 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 样品提取 | 第21-22页 |
| 2.2.2 标准溶液的配制 | 第22页 |
| 2.2.3 仪器条件 | 第22-24页 |
| 2.3 优化试验 | 第24页 |
| 2.3.1 样品-水体积比的优化 | 第24页 |
| 2.3.2 加盐量及种类的选择 | 第24页 |
| 2.3.3 净化剂的选择 | 第24页 |
| 2.4 方法验证 | 第24-25页 |
| 2.4.1 标准曲线，线性关系，LOD和LOQ | 第24-25页 |
| 2.4.2 准确度和精密度 | 第25页 |
| 2.5 数据分析 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-36页 |
| 3.1 仪器条件优化 | 第26页 |
| 3.2 葡萄酒-水体积比优化 | 第26-28页 |
| 3.3 加盐量及种类的选择 | 第28-29页 |
| 3.4 净化作用的影响 | 第29-31页 |
| 3.5 基质效应的评估 | 第31-32页 |
| 3.6 方法学验证 | 第32-33页 |
| 3.6.1 线性关系，LOD和LOQ | 第32页 |
| 3.6.2 准确度和精密度 | 第32-33页 |
| 3.7 实际样品测定 | 第33-36页 |
| 3.7.1 真菌毒素标品图 | 第33-34页 |
| 3.7.2 样品色谱图及含量结果 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-40页 |
| 4.1 检测方法的选择 | 第36页 |
| 4.2 仪器方法的优化 | 第36-37页 |
| 4.2.1 质谱方法的优化 | 第36-37页 |
| 4.2.2 液相方法的优化 | 第37页 |
| 4.3 样品前处理的优化 | 第37-38页 |
| 4.3.1 QuEChERS方法的应用 | 第37-38页 |
| 4.3.2 基质效应的影响 | 第38页 |
| 4.4 葡萄酒及其原料中真菌毒素的检测 | 第38-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 导师简介 | 第51-52页 |