| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-14页 |
| 前言 | 第14-22页 |
| 参考文献 | 第17-22页 |
| 材料与方法 | 第22-43页 |
| 1. 材料 | 第22-30页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22-24页 |
| ·主要仪器 | 第24-25页 |
| ·溶液配制 | 第25-30页 |
| 2. 方法 | 第30-43页 |
| ·脊神经结扎（Spinal Nerve Ligation, SNL）神经病理性疼痛模型的建立 | 第30-31页 |
| ·行为学检测 | 第31-33页 |
| ·星形胶质细胞的体外培养 | 第33-34页 |
| ·组织和细胞的免疫荧光染色 | 第34-35页 |
| ·原位杂交检测 | 第35-36页 |
| ·组织和细胞的 ELISA 检测 | 第36-37页 |
| ·Real-time RT-PCR | 第37-39页 |
| ·Western blot | 第39-41页 |
| ·鞘内注射药物 | 第41页 |
| ·图像数据的处理及统计分析 | 第41-43页 |
| 结果 | 第43-72页 |
| 1. SNL 神经病理性疼痛模型的建立及行为学检测 | 第43-46页 |
| ·脊神经结扎（SNL）手术不影响小鼠的生长发育 | 第43页 |
| ·SNL 手术后小鼠运动协调能力不受影响 | 第43-44页 |
| ·SNL 诱发小鼠同侧后爪产生了神经病理性疼痛 | 第44-46页 |
| 2. SNL 诱导脊髓星形胶质细胞表达 CXCL1 | 第46-55页 |
| ·SNL 后脊髓中 CXCL1 mRNA 表达增加 | 第46页 |
| ·SNL 后同侧脊髓背角中 CXCL1 蛋白表达增加 | 第46-50页 |
| ·SNL 诱导脊髓 CXCL1 表达的细胞类型 | 第50-51页 |
| ·SNL 诱导激活同侧脊髓的星形胶质细胞和小胶质细胞 | 第51-54页 |
| ·SNL 后脊髓 CXCL1 的表达和激活的星形胶质细胞和小胶质细胞相关性分析 | 第54-55页 |
| 3. 星形胶质细胞通过 TNF-α—JNK 信号通路表达 CXCL1 | 第55-65页 |
| ·SNL 诱导脊髓 TNF-α mRNA 和 CXCL1 mRNA 表达相继增加 | 第55页 |
| ·抑制 TNF-α的功能缓解神经病理性疼痛的产生并减低 CXCL1 mRNA 的表达 | 第55-56页 |
| ·TNF-α鞘内注射诱导脊髓 CXCL1 表达升高 | 第56-59页 |
| ·JNK 信号通路介导 TNF-α引起的 CXCL1 表达上调 | 第59-63页 |
| ·鞘内注射 CXCL1 中和性抗体部分逆转 SNL 诱导的机械性触诱发痛和热痛觉过敏 | 第63-65页 |
| 4. CXCL1 增强脊髓背角神经元兴奋性在神经病理性疼痛的易化中发挥作用 | 第65-72页 |
| ·鞘内注射 CXCL1 蛋白多肽诱发热痛觉过敏 | 第65页 |
| ·鞘内注射 CXCL1 蛋白多肽能兴奋脊髓背角神经元 | 第65-68页 |
| ·CXCR2 表达于脊髓神经元 | 第68页 |
| ·SNL 诱导脊髓 CXCR2 表达增加 | 第68-70页 |
| ·鞘内注射 CXCR2 拮抗剂部分逆转 SNL 诱导的机械性触诱发痛和热痛觉过敏 | 第70-72页 |
| 讨论 | 第72-80页 |
| 1. 神经病理性疼痛模型的选择 | 第72-73页 |
| 2. SNL 后脊髓星形胶质细胞上调表达 CXCL1 与神经病理性疼痛 | 第73-75页 |
| 3. 星形胶质细胞通过 TNF-α—JNK 信号通路上调表达 CXCL | 第75-77页 |
| 4. CXCL1-CXCR2 参与神经病理性疼痛的中枢敏化 | 第77-80页 |
| 结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 综述 | 第91-110页 |
| 参考文献 | 第101-110页 |
| 英文缩写词表（Abbreviation） | 第110-112页 |
| 博士生期间完成的论文 | 第112-114页 |
| 博士生期间承担科研项目情况 | 第114-115页 |
| 博士生期间科研获奖情况 | 第115页 |
| 博士生期间参编教材情况 | 第115页 |
| 博士生期间参加学术会议情况 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
