| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-26页 |
| ·干扰素-γ 的研究进展 | 第14-18页 |
| ·IFN-γ理化特性及分子结构 | 第14-15页 |
| ·IFN-γ产生及诱导剂 | 第15页 |
| ·IFN-γ生物学活性及其作用机制 | 第15-17页 |
| ·IFN-γ的应用及发展前景 | 第17-18页 |
| ·干扰素-γ 受体的研究进展 | 第18-25页 |
| ·IFN-γ受体理化特性及分子结构 | 第19-20页 |
| ·干扰素受体的亲和力 | 第20-21页 |
| ·IFN-γ信号传导 | 第21-23页 |
| ·IFN-γ受体的应用及发展前景 | 第23-25页 |
| ·论文主要研究内容及目的意义 | 第25-26页 |
| 第二章 牛 IFN-γ 受体的表达 | 第26-41页 |
| ·材料与方法 | 第26-32页 |
| ·毒株、菌株、质粒和细胞 | 第26页 |
| ·主要试剂 | 第26页 |
| ·真核表达质粒pCAGG-MCS-BoO（pCAGG-BoO）的构建 | 第26-27页 |
| ·pCAGG-BoO 质粒的大量提取 | 第27-28页 |
| ·pCAGG-BoO 质粒的转染 | 第28页 |
| ·重组杆状病毒表达的BoIFN-γ抗病毒活性检测 | 第28-29页 |
| ·重组受体与BoIFN-γ亲和力的研究 | 第29页 |
| ·原核表达质粒pGEX-6P-1-BoO 和pGEX-6P-1-BoTI 的构建 | 第29-30页 |
| ·大肠杆菌表达重组蛋白pGEX-BoO 和pGEX-BoTI 和SDS-PAGE凝胶电泳 | 第30-31页 |
| ·重组蛋白的纯化 | 第31-32页 |
| ·Western-blotting 检测纯化后重组蛋白 | 第32页 |
| ·结果 | 第32-39页 |
| ·序列分析结果 | 第32-33页 |
| ·真核表达质粒pCAGG-MCS-BoO（pCAGG-BoO）的构建结果 | 第33-34页 |
| ·重组杆状病毒表达BoIFN-γ抗病毒活性检测结果 | 第34-35页 |
| ·重组受体与BoIFN-γ亲和力的研究结果 | 第35-36页 |
| ·原核表达质粒pGEX-BoO 和pGEX-BoTI 的构建 | 第36-37页 |
| ·诱导表达重组蛋白pGEX-BoO 和pGEX-BoTI 及经SDS-PAGE鉴定结果 | 第37-38页 |
| ·重组蛋白的纯化结果 | 第38-39页 |
| ·Western-blotting 鉴定 | 第39页 |
| ·讨论 | 第39-41页 |
| ·关于受体蛋白的真核表达 | 第39-40页 |
| ·关于受体蛋白的原核表达 | 第40-41页 |
| 第三章 基于重组牛 IFN-γ 受体建立 BoIFN-γ 定量检测方法 | 第41-53页 |
| ·材料与方法 | 第41-43页 |
| ·毒株、菌株、质粒和细胞 | 第41页 |
| ·主要试剂 | 第41页 |
| ·BoIFN-γ蛋白的原核表达和纯化及SDS-PAGE 凝胶电泳 | 第41页 |
| ·兔抗BoIFN-γ多克隆抗体的制备 | 第41-42页 |
| ·大肠杆菌原核表达BoIFN-γ定量 | 第42页 |
| ·双夹心ELISA 检测方法的建立及反应条件的优化 | 第42-43页 |
| ·重组受体检测原核表达BoIFN-γ定量标准曲线的绘制 | 第43页 |
| ·美国ADL 公司商品化牛IFN-γELISA 检测试剂盒检测BoIFN-γ效果鉴定 | 第43页 |
| ·重组受体检测重组杆状病毒表达BoIFN-γ抗病毒活性标准曲线的绘制 | 第43页 |
| ·结果 | 第43-51页 |
| ·BoIFN-γ蛋白的原核表达和纯化及SDS-PAGE 鉴定结果 | 第43-44页 |
| ·兔抗BoIFN-γ多克隆抗体的制备结果 | 第44页 |
| ·大肠杆菌原核表达BoIFN-γ定量 | 第44页 |
| ·抗原捕捉ELISA 检测方法的建立 | 第44-47页 |
| ·重组受体检测原核表达BoIFN-γ定量标准曲线的绘制 | 第47-48页 |
| ·美国ADL 公司商品化牛IFN-γELISA 检测试剂盒检测BoIFN-γ效果鉴定 | 第48-49页 |
| ·重组受体检测重组杆状病毒表达BoIFN-γ生物学活性标准曲线的绘制 | 第49-51页 |
| ·讨论 | 第51-53页 |
| 第四章 全文结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
