| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-24页 |
| 一 废用性肌萎缩的研究进展 | 第14-22页 |
| 1. 废用对骨骼肌的影响 | 第14-16页 |
| 2. 肌梭在废用性肌萎缩发生中的作用 | 第16-18页 |
| 3. 废用性肌萎缩模型及评价方法 | 第18-19页 |
| 4. 冬眠动物肌肉生理的研究进展 | 第19-22页 |
| 二、研究进展的总结与分析 | 第22-24页 |
| 第一部分 黄鼠的生物学特征、生态学特征和实验驯化 | 第24-37页 |
| 一 黄鼠的生物学特征 | 第24-25页 |
| 1. 黄鼠的分类及分布 | 第24-25页 |
| 2. 黄鼠的形态学特征 | 第25页 |
| 二、黄鼠的生态学特征及野外采集 | 第25-28页 |
| 1. 黄鼠的生态学特征 | 第25-28页 |
| 2. 黄鼠的野外采集 | 第28页 |
| 三、黄鼠的实验室驯化、冬眠及繁殖 | 第28-34页 |
| 1. 黄鼠的实验室驯化与饲养 | 第28-29页 |
| 2. 黄鼠的冬眠 | 第29-32页 |
| 3. 黄鼠的繁殖 | 第32-34页 |
| 四、黄鼠吊尾模型的建立 | 第34-35页 |
| 五、讨论 | 第35页 |
| 六、小结 | 第35-37页 |
| 第二部分 尾部悬吊对黄鼠SOL形态结构的影响 | 第37-50页 |
| 一 材料与方法 | 第37-40页 |
| 1. 实验动物 | 第37-38页 |
| 2. 动物模型的建立与分组 | 第38页 |
| 3. 主要仪器和常用液体的配制 | 第38-39页 |
| 4. 取材与标本制备 | 第39页 |
| 5. 组织化学染色 | 第39-40页 |
| 6. 组织切片的制备及显微结构观察 | 第40页 |
| 7. 数据采集与统计分析 | 第40页 |
| 二、结果 | 第40-47页 |
| 1. 尾部悬吊对黄鼠、大鼠SOL重量的影响 | 第40-41页 |
| 2. 尾部悬吊对黄鼠、大鼠SOL肌纤维CSA的影响 | 第41-43页 |
| 3. 尾部悬吊对黄鼠、大鼠SOL肌梭内、外肌显微结构的影响 | 第43-47页 |
| 三、讨论 | 第47-48页 |
| 1. 尾部悬吊对黄鼠SOL一般形态的影响 | 第47-48页 |
| 2. 尾部悬吊对黄鼠SOL肌梭内、外肌显微结构的影响 | 第48页 |
| 四、小结 | 第48-50页 |
| 第三部分 尾部悬吊对黄鼠SOL梭内、外肌mATPase活性的影响 | 第50-60页 |
| 一 材料与方法 | 第51-52页 |
| 1. 实验动物 | 第51页 |
| 2. 动物模型的建立与分组 | 第51页 |
| 3. 主要仪器和常用液体的配制 | 第51页 |
| 4. 取材与标本制备 | 第51页 |
| 5. 组织化学染色 | 第51页 |
| 6. 数据采集与统计分析 | 第51-52页 |
| 二、结果 | 第52-58页 |
| 1. SOL梭外肌纤维构成比 | 第52-53页 |
| 2. SOL梭内肌纤维mATPase活性 | 第53-58页 |
| 三、讨论 | 第58-59页 |
| 四、小结 | 第59-60页 |
| 第四部分 冬眠黄鼠体重、SOL重量及肌球蛋白重链表达水平的变化 | 第60-68页 |
| 一 材料与方法 | 第60-62页 |
| 1. 实验动物及分组 | 第60-61页 |
| 2. 主要仪器试剂和常用液体的配制 | 第61页 |
| 3. 取材与标本制备 | 第61页 |
| 4. MHC免疫组织化学染色 | 第61-62页 |
| 5. 数据采集 | 第62页 |
| 二、结果 | 第62-66页 |
| 1. 体重和SOL重量变化 | 第62-64页 |
| 2. MHC特异性抗体免疫组化染色 | 第64-66页 |
| 三、讨论 | 第66-67页 |
| 1. 体重和SOL重量的变化 | 第66页 |
| 2. 肌球蛋白重链表达水平的变化 | 第66-67页 |
| 四、小结 | 第67-68页 |
| 总结、不足与展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
