| 摘要 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第8-11页 |
| 一、 前言 | 第11-20页 |
| 1 碱性成纤维细胞生长因子简介 | 第11-12页 |
| 2 阿尔茨海默病的研究现状 | 第12-16页 |
| 3 bFGF、β-淀粉样蛋白与AD的实验研究现状 | 第16-18页 |
| 4 本课题研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 二、 材料与方法 | 第20-33页 |
| 2．1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2．2 器材 | 第21页 |
| 2．3 仪器 | 第21页 |
| 2．4 试剂盒 | 第21页 |
| 2．5 试剂配制 | 第21-27页 |
| 2．6 实验方法 | 第27-32页 |
| 2．6．1 细胞培养及鉴定 | 第27页 |
| 2．6．2 凋亡细胞形态染色法 | 第27-28页 |
| 2．6．2．1 Giema's染色 | 第27页 |
| 2．6．2．2 Hoechst染色 | 第27-28页 |
| 2．6．3 琼脂糖凝胶电泳法分析细胞凋亡 | 第28页 |
| 2．6．4 流式细胞仪检测细胞凋亡率 | 第28-29页 |
| 2．6．5 海马神经细胞ICE,Bcl-2．Bax的表达的western blot检测 | 第29-30页 |
| 2．6．6 AD痴呆大鼠模型的制作 | 第30页 |
| 2．6．7 Morris水迷宫检测动物行为 | 第30-31页 |
| 2．6．8 AD痴呆大鼠海马ICE,Bcl-2,Bax表达的Western blot检测 | 第31页 |
| 2．6．9 组织切片的制备 | 第31页 |
| 2．6．10 SABC免疫组化检测细胞内ICE、Bcl-2、Bax的表达 | 第31-32页 |
| 2．6．11 组织切片的HE染色 | 第32页 |
| 2．7 数据处理方法 | 第32-33页 |
| 三、 实验结果 | 第33-38页 |
| 3．1 离体实验结果 | 第33-35页 |
| 3．1．1 细胞形态学观察及Gimea's Hoechst33258染色 | 第33页 |
| 3．1．2 琼脂糖凝胶电泳法分析细胞凋亡 | 第33-34页 |
| 3．1．3 流式细胞仪检测细胞凋亡率 | 第34页 |
| 3．1．4 海马神经细胞ICE．Bcl-2．Bax的表达的western blot检测 | 第34-35页 |
| 3．2 在体实验结果 | 第35-38页 |
| 3．2．1 动物一般状况 | 第35页 |
| 3．2．2 定位航行实验 | 第35页 |
| 3．2．3 空间探索实验 | 第35-36页 |
| 3．2．4 AD痴呆大鼠海马ICE．Bcl-2．Bax表达的Western blot检测 | 第36-37页 |
| 3．2．5 脑组织免疫组化染色 | 第37页 |
| 3．2．6 脑组织病理检查情况 | 第37-38页 |
| 四、 讨论 | 第38-49页 |
| 4．1 细胞凋亡的研究 | 第38-39页 |
| 4．1．1 细胞凋亡的研究方法 | 第38-39页 |
| 4．1．2 细胞凋亡的阶段、途径及相关调控因子 | 第39页 |
| 4．2 Aβ、bFGF与海马神经元凋亡 | 第39-43页 |
| 4．2．1 Aβ诱导海马神经元凋亡的毒性作用 | 第39-42页 |
| 4．2．2 bFGF对Aβ_（25-35）诱导海马神元凋亡的抑制 | 第42-43页 |
| 4．3 Aβ、bFGF与AD痴呆模型大鼠 | 第43-47页 |
| 4．3．1 AD痴呆大鼠的Morris水迷宫检测 | 第43-44页 |
| 4．3．2 Aβ导致大鼠产生AD样痴呆的作用 | 第44-46页 |
| 4．3．3 bFGF对AD样痴呆模型大鼠的行为改善作用 | 第46-47页 |
| 4．4 bFGF、神经营养因子与AD的治疗 | 第47-49页 |
| 五、 结论与展望 | 第49-50页 |
| 六、 参考文献 | 第50-59页 |
| 七、 附图 | 第59-69页 |
| 附录： 在学期间发表的论文及科研成果清单 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
