| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-34页 |
| ·萘酰亚胺类衍生物研究现状 | 第14-16页 |
| ·概述 | 第14页 |
| ·单萘酰亚胺类衍生物 | 第14-15页 |
| ·双荼酰亚胺类衍生物 | 第15-16页 |
| ·萘酰亚胺类化合物的发展前景 | 第16页 |
| ·细胞周期的研究进展 | 第16-23页 |
| ·细胞周期检测点 | 第17-18页 |
| ·细胞周期蛋白(cyclin) | 第18-20页 |
| ·细胞周期素依赖激酶(CDK) | 第20-22页 |
| ·细胞周期调控中各元素间的相互作用 | 第22-23页 |
| ·细胞凋亡的研究进展 | 第23-28页 |
| ·细胞凋亡的过程及机理 | 第23-27页 |
| ·细胞凋亡的调节 | 第27-28页 |
| ·肿瘤多药耐药的研究进展 | 第28-30页 |
| ·药物转运耐药机制 | 第28-30页 |
| ·细胞核相关耐药机制 | 第30页 |
| ·研究目标、内容、创新点和意义 | 第30-34页 |
| ·研究目标 | 第30页 |
| ·研究内容 | 第30-32页 |
| ·研究创新点和意义 | 第32-34页 |
| 第2章 新型Naphthalimide类衍生物B1的体外抗肿瘤活性研究 | 第34-42页 |
| ·引言 | 第34页 |
| ·材料与方法 | 第34-37页 |
| ·细胞株 | 第34页 |
| ·化合物 | 第34-35页 |
| ·主要试剂 | 第35-36页 |
| ·主要仪器 | 第36页 |
| ·主要试剂的配制 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-37页 |
| ·统计分析 | 第37页 |
| ·实验结果 | 第37-41页 |
| ·B1对不同细胞存活率的影响 | 第37-39页 |
| ·B1对不同细胞生长抑制作用 | 第39-40页 |
| ·B1对HeLa细胞抑制作用的剂量和时间依赖性 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-42页 |
| 第3章 新型Naphthalimide类衍生物B1抑制HeLa细胞增殖的药效学研究 | 第42-50页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与方法 | 第42-44页 |
| ·主要试剂 | 第42-43页 |
| ·主要仪器 | 第43页 |
| ·主要试剂的配制 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-44页 |
| ·统计分析 | 第44页 |
| ·实验结果 | 第44-48页 |
| ·B1对HeLa细胞周期的影响 | 第44-45页 |
| ·B1对HeLa细胞凋亡率的影响 | 第45-47页 |
| ·B1对HeLa细胞形态的影响 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| 第4章 新型Naphthalimide类衍生物B1抑制HeLa细胞增殖的分子机理研究 | 第50-68页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·材料与方法 | 第50-59页 |
| ·主要试剂 | 第51-52页 |
| ·主要仪器 | 第52-53页 |
| ·主要试剂的配制 | 第53-55页 |
| ·实验方法 | 第55-59页 |
| ·统计分析 | 第59页 |
| ·实验结果 | 第59-65页 |
| ·B1诱导细胞色素C释放 | 第59-60页 |
| ·B1对细胞周期相关蛋白表达的影响 | 第60-62页 |
| ·B1对细胞周期相关基因mRNA水平的影响 | 第62页 |
| ·B1对细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第62-63页 |
| ·B1对caspase-3,-8,-9活性的影响 | 第63页 |
| ·p53siRNA转染HeLa细胞后,B1诱导细胞周期阻滞及凋亡的变化 | 第63-65页 |
| ·讨论 | 第65-68页 |
| 第5章 新型Naphthalimide类衍生物B1诱导MCF7细胞凋亡的药效学研究 | 第68-73页 |
| ·引言 | 第68页 |
| ·材料与方法 | 第68-69页 |
| ·主要试剂 | 第68页 |
| ·主要仪器 | 第68页 |
| ·实验方法 | 第68页 |
| ·统计分析 | 第68-69页 |
| ·实验结果 | 第69-71页 |
| ·B1对MCF-7细胞凋亡率的影响 | 第69-70页 |
| ·B1诱导MCF-7细胞凋亡不依赖于caspases家族 | 第70-71页 |
| ·讨论 | 第71-73页 |
| 第6章 新型Naphthalimide类衍生物B1诱导MCF7细胞凋亡的分子机理研究 | 第73-85页 |
| ·引言 | 第73页 |
| ·材料与方法 | 第73-77页 |
| ·主要试剂 | 第73-74页 |
| ·主要仪器 | 第74页 |
| ·主要试剂的配制 | 第74页 |
| ·实验方法 | 第74-77页 |
| ·统计分析 | 第77页 |
| ·结果 | 第77-83页 |
| ·B1通过Bcl-2诱导MCF-7细胞凋亡 | 第77-80页 |
| ·B1介导的Bcl-2下调与p53有关 | 第80-82页 |
| ·识别Bcl-2启动子p53结合位点 | 第82-83页 |
| ·讨论 | 第83-85页 |
| 第7章 新型Naphthalimide类衍生物B1对肿瘤细胞MDR作用的药效学研究 | 第85-97页 |
| ·引言 | 第85页 |
| ·材料与方法 | 第85-86页 |
| ·细胞株与主要试剂 | 第85-86页 |
| ·实验方法 | 第86页 |
| ·统计分析 | 第86页 |
| ·实验结果 | 第86-95页 |
| ·B1抑制Bcl-2过表达导致的HL60细胞耐药作用 | 第86-89页 |
| ·B1诱导Bcl-2过表达细胞凋亡作用 | 第89-95页 |
| ·讨论 | 第95-97页 |
| 第8章 新型Naphthalimide类衍生物B1对肿瘤细胞MDR作用的分子机理研究 | 第97-110页 |
| ·引言 | 第97页 |
| ·材料与方法 | 第97-99页 |
| ·主要试剂 | 第97-98页 |
| ·实验方法 | 第98-99页 |
| ·统计分析 | 第99页 |
| ·实验结果 | 第99-109页 |
| ·B1对14-3-3σ诱导Bcl-2过表达细胞凋亡的作用 | 第99-102页 |
| ·B1通过甲基化结合蛋白MBD2下调14-3-3σ | 第102-106页 |
| ·B1诱导Bcl-2过表达细胞凋亡与MBD2有关 | 第106-109页 |
| ·讨论 | 第109-110页 |
| 第9章 结论 | 第110-113页 |
| 参考文献 | 第113-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 在读期间发表论文和专利情况 | 第127-128页 |
