| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-19页 |
| 1.1 香椿简介 | 第12页 |
| 1.2 化学成分研究 | 第12-15页 |
| 1.2.1 黄酮类化合物 | 第12-13页 |
| 1.2.2 酚类 | 第13页 |
| 1.2.3 营养成分 | 第13-14页 |
| 1.2.4 挥发成分 | 第14页 |
| 1.2.5 其它成分 | 第14-15页 |
| 1.3 生物活性研究 | 第15-17页 |
| 1.3.1 抑菌 | 第15页 |
| 1.3.2 抗氧化 | 第15页 |
| 1.3.3 降血糖 | 第15-16页 |
| 1.3.4 抗肿瘤 | 第16页 |
| 1.3.5 其他作用 | 第16-17页 |
| 1.4 本论文的立题背景及主要研究内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 立题背景及研究意义 | 第17页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 香椿叶总黄酮的提取及其抗氧化活性 | 第19-34页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第19页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第19页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 香椿叶的前处理 | 第19页 |
| 2.2.2 总黄酮提取率测定芦丁标准曲线的绘制 | 第19-20页 |
| 2.2.3 芦丁标准曲线的绘制 | 第20页 |
| 2.2.4 香椿叶中总黄酮的提取与测定 | 第20-21页 |
| 2.2.5 抗氧化活性检测 | 第21-22页 |
| 2.2.5.1 氧自由基清除能力检测（ORAC） | 第21-22页 |
| 2.2.5.2 ABTS 自由基清除能力测定（ABTS） | 第22页 |
| 2.2.5.3 DPPH 自由基清除能力测定（DPPH） | 第22页 |
| 2.2.6 单因素实验设计 | 第22-23页 |
| 2.2.6.1 乙醇浓度对提取工艺的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.6.2 料液比对提取工艺的影响 | 第23页 |
| 2.2.7 响应面优化实验设计 | 第23-24页 |
| 2.2.8 数据分析 | 第24页 |
| 2.3 实验结果 | 第24-33页 |
| 2.3.1 各因素对黄酮提取率的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.1.1 乙醇浓度对黄酮提取率的影响 | 第24页 |
| 2.3.1.2 液料比对黄酮提取率的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2 响应面优化香椿叶黄酮超声波提取工艺条件 | 第25-31页 |
| 2.3.2.1 优化总黄酮提取率 | 第26-28页 |
| 2.3.2.2 优化氧自由基吸收能力（ORAC 值） | 第28-31页 |
| 2.3.2.3 最优提取条件的确定 | 第31页 |
| 2.3.3 最优条件提取黄酮粗提物的抗氧化活性 | 第31-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 香椿叶黄酮粗提物的生物活性研究 | 第34-41页 |
| 3.1 材料与设备 | 第34页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第34页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 香椿叶黄酮粗提物的制备 | 第34-35页 |
| 3.2.2 抗增殖活性检测 | 第35页 |
| 3.2.3 -淀粉酶抑制活性的测定 | 第35-36页 |
| 3.2.4 蔗糖酶和麦芽糖酶抑制活性测定 | 第36页 |
| 3.2.5 数据分析 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-39页 |
| 3.3.1 黄酮粗提物对癌细胞的增殖抑制活性 | 第37-38页 |
| 3.3.2 黄酮粗提物对糖尿病关键酶的抑制活性 | 第38-39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-41页 |
| 第四章 香椿叶黄酮主要活性部位的筛选 | 第41-50页 |
| 4.1 材料与设备 | 第41页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第41页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-42页 |
| 4.2.1 黄酮粗提物的不同极性部位的制备 | 第41-42页 |
| 4.2.2 各极性部位的抗氧化活性评价 | 第42页 |
| 4.2.3 各极性部位的抗增殖活性评价 | 第42页 |
| 4.2.4 数据分析 | 第42页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第42-48页 |
| 4.3.1 各极性部位的收率 | 第42-43页 |
| 4.3.2 各极性部位的抗氧化活性 | 第43-44页 |
| 4.3.3 各极性部位的抗增殖活性 | 第44-46页 |
| 4.3.4 各极性部位的糖尿病关键酶抑制活性 | 第46-48页 |
| 4.4 本章小结 | 第48-50页 |
| 第五章 乙酸乙酯部位的活性成分分离及结构鉴定 | 第50-69页 |
| 5.1 材料与设备 | 第50-51页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第50-51页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第51页 |
| 5.2 实验方法 | 第51-53页 |
| 5.2.1 聚酰胺树脂柱层析 | 第51页 |
| 5.2.2 高效液相色谱定性分析 | 第51-52页 |
| 5.2.3 中低压制备液相分离 | 第52页 |
| 5.2.4 化合物结构分析 | 第52页 |
| 5.2.5 化合物的生物活性测定 | 第52-53页 |
| 5.2.6 数据分析 | 第53页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第53-67页 |
| 5.3.1 单体化合物的分离纯化 | 第53-54页 |
| 5.3.2 HPLC 定性分析 | 第54-56页 |
| 5.3.3 单体化合物的结构鉴定 | 第56-63页 |
| 5.3.3.1 化合物 1 的结构鉴定 | 第56-59页 |
| 5.3.3.2 化合物 2 的结构鉴定 | 第59-60页 |
| 5.3.3.3 化合物 3 的结构鉴定 | 第60-62页 |
| 5.3.3.4 化合物 4 的结构鉴定 | 第62-63页 |
| 5.3.4 单体化合物的抗氧化活性 | 第63-64页 |
| 5.3.5 单体化合物的抗增殖活性 | 第64-66页 |
| 5.3.6 单体化合物的糖尿病关键酶抑制活性 | 第66-67页 |
| 5.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 结论和展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-78页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 附件 | 第80页 |
