| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-26页 |
| 1 花色苷类物质功能活性的研究进展及开发利用现状 | 第14-17页 |
| 1.1 花色苷类物质的结构、性质及种类 | 第14页 |
| 1.2 花色苷类物质的功能活性 | 第14-16页 |
| 1.2.1 抗氧化、清除自由基 | 第14-15页 |
| 1.2.2 抗癌防癌 | 第15页 |
| 1.2.3 抗衰老及延缓衰老 | 第15页 |
| 1.2.4 改善视网膜功能 | 第15-16页 |
| 1.2.5 改善血液循环、预防心血管疾病 | 第16页 |
| 1.2.6 其他作用 | 第16页 |
| 1.3 花色苷类物质的开发利用现状 | 第16-17页 |
| 2 花色苷类物质提取分离的研究现状 | 第17-18页 |
| 3 花色苷类物质抗氧化功能的研究现状 | 第18-20页 |
| 3.1 花色苷类物质抗氧化作用机理及其研究进展 | 第18-19页 |
| 3.2 抗氧化作用的评价方法 | 第19-20页 |
| 4 花色苷类物质抑菌作用的研究现状 | 第20-21页 |
| 4.1 花色苷类物质抑菌机理及其研究进展 | 第20页 |
| 4.2 抑菌作用的评价方法 | 第20-21页 |
| 5 乌饭树的营养保健功效与开发 | 第21-24页 |
| 5.1 乌饭树资源简介 | 第21-22页 |
| 5.2 乌饭树植物资源的研究进展 | 第22-23页 |
| 5.2.1 乌饭树果实化学成分及其有效成分研究 | 第22-23页 |
| 5.2.2 乌饭树叶化学成分及其有效成分研究 | 第23页 |
| 5.3 乌饭树资源的开发利用现状 | 第23-24页 |
| 6 本项目研究意义和内容 | 第24-26页 |
| 6.1 研究意义 | 第24页 |
| 6.2 研究内容 | 第24-26页 |
| 第二章 乌饭树果实花色苷的提取工艺优化研究 | 第26-50页 |
| 第一节 有机溶剂浸提乌饭树果实花色苷工艺研究 | 第26-36页 |
| 1 材料与方法 | 第26-29页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第26页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第26-27页 |
| 1.3 试验方法 | 第27-28页 |
| 1.3.1 提取溶剂的选择 | 第27页 |
| 1.3.2 乌饭树果实花色苷乙醇浸提法的单因素试验 | 第27-28页 |
| 1.3.3 正交试验设计优化乌饭树果实花色苷的浸提工艺 | 第28页 |
| 1.3.4 提取次数对花色苷提取效果的影响 | 第28页 |
| 1.4 指标的测定 | 第28-29页 |
| 1.4.1 花色苷含量的测定 | 第28页 |
| 1.4.2 总抗氧化能力(T_(AC))测定 | 第28-29页 |
| 1.5 数据处理及分析 | 第29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-35页 |
| 2.1 提取溶剂的选择 | 第29-30页 |
| 2.2 各因素对乌饭树果实花色苷提取效果的影响 | 第30-32页 |
| 2.2.1 乙醇浓度 | 第30页 |
| 2.2.2 浸提温度 | 第30-31页 |
| 2.2.3 料液比 | 第31-32页 |
| 2.2.4 浸提时间 | 第32页 |
| 2.3 乌饭树果实花色苷提取正交试验结果 | 第32-34页 |
| 2.4 提取次数的确定 | 第34-35页 |
| 2.5 乌饭树果实花色苷含量与总抗氧化能力的关系 | 第35页 |
| 3 结论与讨论 | 第35-36页 |
| 第二节 复合酶法提取乌饭树果实花色苷的研究 | 第36-50页 |
| 1 材料与方法 | 第36-39页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第36页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第36-37页 |
| 1.3 试验方法 | 第37-39页 |
| 1.3.1 酶法提取乌饭树果实花色苷的工艺 | 第37页 |
| 1.3.2 酶的筛选 | 第37页 |
| 1.3.3 酶法提取乌饭树果实花色苷的单因素试验 | 第37-38页 |
| 1.3.4 酶解工艺参数的优化 | 第38-39页 |
| 1.4 花色苷含量的测定 | 第39页 |
| 1.5 数据处理及分析 | 第39页 |
| 2 结果分析 | 第39-49页 |
| 2.1 酶的筛选 | 第39-40页 |
| 2.2 各因素对乌饭树果实花色苷提取效果的影响 | 第40-44页 |
| 2.2.1 复合酶的加酶量 | 第40-41页 |
| 2.2.2 复合酶的酶活力之比 | 第41页 |
| 2.2.3 复合酶的酶解温度 | 第41-42页 |
| 2.2.4 复合酶的酶解时间 | 第42-43页 |
| 2.2.5 复合酶的pH | 第43页 |
| 2.2.6 料液比 | 第43-44页 |
| 2.3 二次回归正交旋转组合设计试验优化酶解工艺参数 | 第44-49页 |
| 2.3.1 数学模型的建立 | 第45-46页 |
| 2.3.2 二次回归模型的显著性检验 | 第46页 |
| 2.3.3 单因素作用分析 | 第46-47页 |
| 2.3.4 双因素交互作用分析 | 第47-49页 |
| 2.3.5 最佳酶解工艺方案的确定 | 第49页 |
| 3 结论与讨论 | 第49-50页 |
| 第三章 乌饭树果实花色苷提取物及其极性分部的体外抗氧化活性研究 | 第50-64页 |
| 1 材料与方法 | 第50-55页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第50-51页 |
| 1.3 试验方法 | 第51-54页 |
| 1.3.1 乌饭树果实花色苷提取物的制备及其抗氧化活性研究 | 第51-52页 |
| 1.3.2 乌饭树果实花色苷提取物不同极性分部的制备及其抗氧化活性研究 | 第52-54页 |
| 1.3.3 乌饭树果实乙酸乙酯部的初步鉴定 | 第54页 |
| 1.4 数据处理及分析 | 第54-55页 |
| 2 结果与分析 | 第55-62页 |
| 2.1 乌饭树果实花色苷提取物的体外抗氧化活性研究 | 第55-58页 |
| 2.1.1 乌饭树果实花色苷提取物对·OH的清除能力 | 第55-56页 |
| 2.1.2 乌饭树果实花色苷提取物对O_2~-·的清除能力 | 第56-57页 |
| 2.1.3 乌饭树果实花色苷提取物对脂质体过氧化的抑制能力 | 第57-58页 |
| 2.2 乌饭树果实花色苷提取物不同极性分部的体外抗氧化活性研究 | 第58-61页 |
| 2.2.1 乌饭树果实花色苷提取物不同极性分部的总抗氧化能力比较 | 第58-59页 |
| 2.2.2 乌饭树果实花色苷提取物不同极性分部对·OH的清除能力 | 第59-60页 |
| 2.2.3 乌饭树果实花色苷提取物不同极性分部对O_2~·的清除能力 | 第60页 |
| 2.2.4 乌饭树果实花色苷提取物不同极性分部对脂质体过氧化的抑制能力 | 第60-61页 |
| 2.3 乌饭树果实乙酸乙酯部的初步鉴定 | 第61-62页 |
| 3 结论与讨论 | 第62-64页 |
| 第四章 乌饭树果实花色苷乙酸乙酯部的抑菌作用研究 | 第64-75页 |
| 1 材料与方法 | 第64-67页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第64页 |
| 1.2 供试菌种 | 第64页 |
| 1.3 主要仪器与设备 | 第64-65页 |
| 1.4 试剂和培养基的配制 | 第65页 |
| 1.4.1 0.9%无菌生理盐水 | 第65页 |
| 1.4.2 细菌培养基 | 第65页 |
| 1.4.3 霉菌培养基 | 第65页 |
| 1.4.4 酵母菌培养基 | 第65页 |
| 1.5 试验方法 | 第65-67页 |
| 1.5.1 乌饭树果实花色苷乙酸乙酯部的制备 | 第65页 |
| 1.5.2 菌种的活化与菌悬液的制备 | 第65-66页 |
| 1.5.3 管碟法测定乌饭树果实花色苷乙酸乙酯部的抑菌能力 | 第66页 |
| 1.5.4 最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第66页 |
| 1.5.5 乌饭树果实花色苷乙酸乙酯部抑菌作用的调控 | 第66-67页 |
| 1.6 数据处理及分析 | 第67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-73页 |
| 2.1 乌饭树果实花色苷乙酸乙酯部对不同菌株的抑制作用 | 第67-69页 |
| 2.2 乌饭树果实花色苷乙酸乙酯部的最低抑菌浓度(MIC) | 第69-70页 |
| 2.3 不同处理条件对花色苷乙酸乙酯部抑菌效果的影响 | 第70-73页 |
| 2.3.1 加热预处理 | 第70-71页 |
| 2.3.2 介质pH | 第71页 |
| 2.3.3 作用时间 | 第71-72页 |
| 2.3.4 糖、盐 | 第72-73页 |
| 3 结论与讨论 | 第73-75页 |
| 结论与展望 | 第75-78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
