| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 综述 | 第13-28页 |
| 1 前言 | 第13页 |
| 2.DNA损伤 | 第13-16页 |
| 2.1DNA损伤的来源及种类 | 第13-14页 |
| 2.1.1 外源性DNA损伤 | 第13-14页 |
| 2.1.2 内源性DNA损伤 | 第14页 |
| 2.2 DNA损伤生物标志物及检测方法 | 第14-16页 |
| 2.2.1 DNA损伤生物标志物 | 第14-16页 |
| 2.2.1.1 特异性修复基因 | 第14-15页 |
| 2.2.1.2 特异性酶 | 第15页 |
| 2.2.1.3 DNA加合物 | 第15页 |
| 2.2.1.4 氧化损伤产物 | 第15-16页 |
| 2.2.2 DNA氧化损伤的检测方法 | 第16页 |
| 3.DNA氧化损伤标记物 8-OH-dG研究进展 | 第16-21页 |
| 3.1 8-OH-dG的发现 | 第16-17页 |
| 3.2 8-OH-dG的形成 | 第17页 |
| 3.3 研究 8-OH-dG的意义 | 第17-20页 |
| 3.3.1 8-OH-dG与疾病的联系 | 第17-18页 |
| 3.3.2 细胞水平检测 8-OH-dG意义 | 第18-19页 |
| 3.3.3 体液或组织中检测 8-OH-dG的意义 | 第19页 |
| 3.3.4 选择 8-OH-dG作为DNA氧化损伤标记物的原因 | 第19-20页 |
| 3.4 8-OH-dG分离检测的方法 | 第20-21页 |
| 3.4.1 高效液相色谱—电化学检测器分析法 | 第20页 |
| 3.4.2 酶联免疫吸附法 | 第20-21页 |
| 3.4.3 毛细管电泳 | 第21页 |
| 4.抗氧化剂槲皮素、姜黄素及番茄红素研究进展 | 第21-23页 |
| 4.1 抗氧化剂的概念和意义 | 第21页 |
| 4.2 槲皮素、姜黄素及番茄红素研究进展 | 第21-23页 |
| 4.1.1 槲皮素 | 第21-22页 |
| 4.1.2 姜黄素 | 第22页 |
| 4.1.3 番茄红素 | 第22-23页 |
| 5.毛细管电泳 | 第23-27页 |
| 5.1 毛细管电泳概述 | 第23页 |
| 5.2 毛细管电泳原理 | 第23-24页 |
| 5.3 毛细管电泳分离模式 | 第24-26页 |
| 5.3.1 毛细管区带电泳 | 第24页 |
| 5.3.2 胶束电动毛细管色谱 | 第24-25页 |
| 5.3.3 毛细管凝胶电泳 | 第25页 |
| 5.3.4 毛细管等电聚焦 | 第25页 |
| 5.3.5 毛细管等速电泳 | 第25-26页 |
| 5.3.6 毛细管电色谱 | 第26页 |
| 5.4 毛细管电泳仪 | 第26页 |
| 5.5 毛细管电泳特点 | 第26-27页 |
| 6.本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
| 1.实验材料 | 第28页 |
| 2.实验仪器 | 第28页 |
| 3.实验试剂 | 第28页 |
| 4.实验方法 | 第28-31页 |
| 4.1 毛细管电泳检测条件优化 | 第28页 |
| 4.2 电泳缓冲溶液及标准品溶液的配制 | 第28-29页 |
| 4.2.1 电泳缓冲溶液 | 第28-29页 |
| 4.2.2 标准品溶液 | 第29页 |
| 4.3 紫外检测器波长的选择 | 第29页 |
| 4.4 细胞培养 | 第29页 |
| 4.5 细胞的染毒与收集 | 第29-30页 |
| 4.6 细胞中DNA的提取 | 第30页 |
| 4.6.1 细胞的收集 | 第30页 |
| 4.6.2 细胞裂解及相关蛋白降解 | 第30页 |
| 4.6.3 DNA分离纯化 | 第30页 |
| 4.7 DNA纯度和浓度的检测 | 第30-31页 |
| 4.8 DNA的酶解消化与 5′端去磷酸化 | 第31页 |
| 4.9 上样前处理 | 第31页 |
| 4.9.1 上样前处理法一 | 第31页 |
| 4.9.2 上样前处理法二 | 第31页 |
| 5.实验结果 | 第31-56页 |
| 5.1 毛细管电泳条件的摸索与优化 | 第31-36页 |
| 5.1.1 紫外检测器波长的选择 | 第31页 |
| 5.1.2 不同溶剂对样品出峰情况影响 | 第31-33页 |
| 5.1.3 温度对标准样品出峰情况的影响 | 第33-34页 |
| 5.1.4 精确度及稳定性检测 | 第34-35页 |
| 5.1.5 线性回归方程、检出限及重现性考察 | 第35-36页 |
| 5.2 细胞DNA中 8-OH-dG的CE检测 | 第36-42页 |
| 5.2.1 DNA的提取与酶解 | 第36-37页 |
| 5.2.2 动态PH调节进样法检测HL-60细胞中 8-OH-dG | 第37-38页 |
| 5.2.3 常规进样法检测HL-60细胞中 8-OH-dG | 第38-39页 |
| 5.2.4 毛细管电泳检测不同浓度H2O2处理HL-60细胞中 8-OH-dG | 第39-42页 |
| 5.3 CE检测抗氧化剂对HL-60细胞中DNA氧化损伤的保护作用 | 第42-49页 |
| 5.3.1 DNA的提取与酶解消化效果 | 第42-43页 |
| 5.3.2 姜黄素对H2O2引起的HL-60细胞DNA氧化损伤的保护作用 | 第43-46页 |
| 5.3.3 番茄红素与槲皮素对H2O2引起的HL-60细胞DNA氧化损伤的保护作用 | 第46-49页 |
| 5.4 CE检测抗氧化剂对U87细胞中DNA氧化损伤的保护作用 | 第49-56页 |
| 5.4.1 DNA的提取与酶解消化效果 | 第49-50页 |
| 5.4.2 鱼藤酮对U87的毒性 | 第50-53页 |
| 5.4.3 姜黄素和槲皮素对U87细胞的保护作用 | 第53-56页 |
| 6.分析与讨论 | 第56-58页 |
| 7. 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 攻读硕士期间发表文章 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
