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悬浮力学状态对乳腺肿瘤细胞转移能力的调控及其力学生物学机制

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
1 绪论第15-27页
    1.1 问题的提出及研究意义第15-16页
    1.2 国内外现状研究第16-23页
        1.2.1 基质力学对肿瘤细胞生物学行为的影响第16-18页
        1.2.2 基质力学相关的力学信号转导第18-19页
        1.2.3 肿瘤细胞的生物物理特性第19-21页
        1.2.4 循环肿瘤细胞与悬浮力学状态第21-23页
    1.3 课题的研究目的及研究内容第23-27页
        1.3.1 课题的研究目的与意义第23页
        1.3.2 课题的研究内容第23-25页
        1.3.3 课题的技术路线第25-26页
        1.3.4 课题的特色及创新点第26-27页
2 悬浮力学状态对乳腺肿瘤细胞再粘附的影响及其机制第27-63页
    2.1 引言第27-28页
    2.2 实验材料与仪器设备第28-32页
        2.2.1 主要实验仪器及耗材第28-29页
        2.2.2 主要实验试剂第29-31页
        2.2.3 主要实验试剂配制第31-32页
    2.3 实验方法第32-44页
        2.3.1 细胞培养和处理第32-33页
        2.3.2 透射电镜第33-34页
        2.3.3 粘附实验第34页
        2.3.4 敲低Lamin A/C表达第34-35页
        2.3.5 实时定量PCR第35-38页
        2.3.6 免疫印迹第38-40页
        2.3.7 F/G-actin检测第40页
        2.3.8 免疫荧光和骨架F-actin染色第40-41页
        2.3.9 细胞刚度测定第41页
        2.3.10 细胞运动轨迹追踪第41-42页
        2.3.11 恶性胸腔积液模型建立第42-43页
        2.3.12 数据处理与统计分析第43-44页
    2.4 实验结果第44-60页
        2.4.1 悬浮状态促进乳腺肿瘤细胞再粘附第44-47页
        2.4.2 悬浮状态促进再贴壁乳腺肿瘤细胞的铺展和牢固粘附第47-52页
        2.4.3 悬浮状态提高乳腺肿瘤细胞Lamin A/C的累积第52-54页
        2.4.4 扰乱肌动蛋白骨架的聚合诱导乳腺肿瘤细胞Lamin A/C的累积第54-56页
        2.4.5 Lamin A/C累积有利于悬浮细胞再粘附和骨架重排,但降低再贴壁后肿瘤细胞的运动第56-59页
        2.4.6 悬浮状态诱导Integrin β1 上调促进肿瘤细胞再粘附第59-60页
    2.5 分析与讨论第60-62页
    2.6 小结第62-63页
3 悬浮力学状态对乳腺肿瘤细胞存活、迁移、侵袭和体内转移的影响第63-81页
    3.1 引言第63页
    3.2 主要实验材料与仪器设备第63-64页
        3.2.1 主要实验仪器及耗材第63页
        3.2.2 主要实验试剂第63-64页
        3.2.3 主要实验试剂配制第64页
    3.3 实验方法第64-69页
        3.3.1 细胞培养和处理第64页
        3.3.2 流式细胞周期检测第64-65页
        3.3.3 细胞凋亡检测第65页
        3.3.4 平板克隆第65页
        3.3.5 细胞增殖和生存第65-66页
        3.3.6 迁移和侵袭实验第66页
        3.3.7 动物实验第66-67页
        3.3.8 组织石蜡切片第67-68页
        3.3.9 苏木精-伊红(hematoxylin-eosin, HE)染色第68页
        3.3.10 数据处理与统计分析第68-69页
    3.4 实验结果第69-77页
        3.4.1 悬浮状态对乳腺肿瘤细胞周期、凋亡、克隆形成、以及再贴壁后存活和增殖的影响第69-73页
        3.4.2 悬浮状态对乳腺肿瘤细胞迁移和侵袭能力的影响第73-75页
        3.4.3 悬浮状态对乳腺肿瘤细胞成瘤能力和肺转移的影响第75-77页
    3.5 分析与讨论第77-79页
    3.6 小结第79-81页
4 悬浮力学状态对乳腺肿瘤细胞基因表达转录组的调控第81-95页
    4.1 引言第81页
    4.2 主要实验材料与仪器设备第81页
        4.2.1 主要实验仪器及耗材第81页
        4.2.2 主要实验试剂第81页
        4.2.3 主要实验试剂配制第81页
    4.3 实验方法第81-85页
        4.3.1 细胞培养和处理第81-82页
        4.3.2 TRIzol法提取总RNA第82页
        4.3.3 总RNA质检第82-83页
        4.3.4 测序和信息学分析第83页
        4.3.5 实时定量PCR第83-84页
        4.3.6 免疫印迹第84页
        4.3.7 数据处理与统计分析第84-85页
    4.4 实验结果第85-92页
        4.4.1 总RNA质检第85页
        4.4.2 转录组测序分析第85-88页
        4.4.3 差异表达基因GO功能富集分析第88-90页
        4.4.4 基因验证第90-92页
    4.5 分析与讨论第92-93页
    4.6 小结第93-95页
5 悬浮力学状态诱导COX-2 上调的力学生物学机制及其在乳腺肿瘤细胞转移过程的作用第95-117页
    5.1 引言第95-96页
    5.2 主要实验材料和仪器设备第96-97页
        5.2.1 主要实验仪器及耗材第96页
        5.2.2 主要实验试剂第96页
        5.2.3 主要实验试剂配制第96-97页
    5.3 实验方法第97-102页
        5.3.1 细胞培养和处理第97页
        5.3.2 核/质蛋白分离第97页
        5.3.3 免疫印迹第97页
        5.3.4 悬浮细胞免疫荧光第97页
        5.3.5 实时定量PCR第97-98页
        5.3.6 迁移和侵袭实验第98页
        5.3.7 胞内钙离子检测第98页
        5.3.8 不同刚度聚丙烯酰胺凝胶制备第98-100页
        5.3.9 敲低COX-2 的表达第100页
        5.3.10 动物实验第100-101页
        5.3.11 HE染色第101页
        5.3.12 免疫组化第101-102页
        5.3.13 冰冻切片检测GFP阳性肿瘤细胞第102页
        5.3.14 数据处理与统计分析第102页
    5.4 实验结果第102-115页
        5.4.1 悬浮诱导COX-2/PGE2上调促进乳腺肿瘤细胞的迁移和侵袭第102-104页
        5.4.2 悬浮状态激活Ca2+/CaN/NFAT2/促进COX-2 的表达第104-106页
        5.4.3 扰乱肌动蛋白骨架促进乳腺肿瘤细胞COX-2 的上调第106-110页
        5.4.4 悬浮状态诱导COX-2 上调通过提高转移早期肿瘤细胞的存活促进乳腺肿瘤肺转移第110-115页
    5.5 分析与讨论第115-116页
    5.6 小结第116-117页
6 结论与展望第117-121页
    6.1 主要结论第117-118页
    6.2 后续工作展望第118-121页
致谢第121-123页
参考文献第123-137页
附录第137页
    A. 作者在攻读学位期间发表的论文目录第137页
    B. 作者在攻读学位期间发表的会议论文目录第137页
    C. 作者在攻读学位期间参加科研项目目录第137页

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